摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
目录 | 第7-10页 |
第一章 文献综述 | 第10-35页 |
1 引言 | 第10页 |
2 血管平滑肌的起源 | 第10-13页 |
·胚胎发育期血管平滑肌的来源 | 第10-11页 |
·成体中的血管平滑肌细胞的来源 | 第11-13页 |
3 血管平滑肌表型转化(可塑性) | 第13-17页 |
·血管平滑肌的异质性 | 第13页 |
·血管平滑肌表型可塑性 | 第13-15页 |
·平滑肌分化和去分化的标志 | 第15页 |
·细胞外基质(ECM)和外源生化因子对平滑肌表型的影响 | 第15-16页 |
·染色质修饰在SMC分化中的作用 | 第16-17页 |
4 维甲酸在SMc增殖、分化及血管发育中的作用 | 第17-21页 |
·维甲酸在SMC生长中的作用 | 第17页 |
·维甲酸在血管发生和SMC分化中的作用 | 第17-19页 |
·维甲酸对新生内膜形成的影响 | 第19-20页 |
·未来方向 | 第20-21页 |
参考文献 | 第21-35页 |
第二章 单层贴壁直接诱导ES细胞分化系统的建立 | 第35-53页 |
1 前言 | 第35-36页 |
2 材料和方法 | 第36-43页 |
·材料 | 第36-38页 |
·方法 | 第38-43页 |
3 结果 | 第43-44页 |
·差速贴壁过程的细胞形态观察 | 第43页 |
·明胶浓度对细胞贴壁率的影响 | 第43页 |
·贴壁时间对分离效率的影响 | 第43页 |
·差速贴壁后ES细胞质量检测 | 第43-44页 |
4 讨论 | 第44-48页 |
图版 | 第48-51页 |
参考文献 | 第51-53页 |
第三章 单层帖壁诱导hES细胞向SMC定向分化 | 第53-72页 |
1 前言 | 第53页 |
2、材料和方法 | 第53-57页 |
·材料 | 第53-54页 |
·方法 | 第54-57页 |
3 结果 | 第57-60页 |
·hES细胞的生长特性 | 第57-58页 |
·RA浓度对SMC诱导的影响 | 第58页 |
·hES细胞铺板密度对SMC诱导的影响 | 第58-59页 |
·诱导分化细胞的基因表达鉴定 | 第59页 |
·hES细胞起源的SMC的收缩功能鉴定 | 第59-60页 |
·单层贴壁诱导hES细胞分化为SMC的效率及SMC群体的异质性 | 第60页 |
4 讨论 | 第60-62页 |
图版 | 第62-67页 |
参考文献 | 第67-72页 |
第四章 RA在hESC定向分化为SMC中机制初探 | 第72-92页 |
1 前言 | 第72页 |
2 材料和方法 | 第72-75页 |
·实验材料 | 第72-73页 |
·方法 | 第73-75页 |
3 结果 | 第75-77页 |
·RA加入的初始时间对SMC诱导的影响 | 第75页 |
·RA持续处理的时间对SMC诱导的影响 | 第75-76页 |
·诱导过程的细胞形态变化 | 第76页 |
·维甲酸代谢阻断剂(RAMBA)酮康唑对RA诱导ES细胞定向分化成SMC的影响 | 第76-77页 |
·诱导过程中维甲酸受体和细胞色素CYP26s的基因表达变化 | 第77页 |
4 讨论 | 第77-82页 |
·RA对SMC分化的诱导作用 | 第77-79页 |
·RA在SMC分化中的选择性凋亡作用 | 第79-82页 |
图版 | 第82-87页 |
参考文献 | 第87-92页 |
第五章 单层贴壁法定向诱导ES细胞分化为神经细胞 | 第92-107页 |
1 前言 | 第92页 |
2 材料和方法 | 第92-97页 |
·细胞系 | 第92页 |
·主要试剂 | 第92-93页 |
·主要仪器 | 第93页 |
·方法 | 第93-97页 |
3 结果 | 第97-98页 |
·诱导过程的细胞形态观察 | 第97页 |
·诱导过程的基因表达分析及免疫细胞化学鉴定 | 第97-98页 |
·诱导细胞的电生理检测 | 第98页 |
4 讨论 | 第98-101页 |
图版 | 第101-104页 |
参考文献 | 第104-107页 |
附录 | 第107-114页 |
1 创新性 | 第107-108页 |
2 未解决的问题及其未来研究方向 | 第108-109页 |
3 主要试剂配方 | 第109-113页 |
4 缩略词表 | 第113-114页 |
致谢 | 第114-115页 |
在攻读博士期间发表和待发表的文章 | 第115-116页 |