| 第一章 文献综述 | 第1-20页 |
| 1．1 硅在植物中的作用 | 第10页 |
| 1．2 植物体内硅的含量、分布和存在形态 | 第10-12页 |
| 1．3 植物对硅的吸收、运输和沉积 | 第12-14页 |
| 1．4 硅的沉积机理 | 第14-20页 |
| 1．4．1 硅藻体内SiO_2合成的分子机制 | 第16-17页 |
| 1．4．2 海绵体内诱导SiO_2合成的分子机制 | 第17-18页 |
| 1．4．3 高等植物中硅的沉积机制 | 第18-20页 |
| 第二章 研究背景、思路与内容 | 第20-23页 |
| 2．1 研究背景 | 第20-21页 |
| 2．2 研究思路 | 第21-22页 |
| 2．3 研究内容 | 第22-23页 |
| 第三章 硅结合蛋白催化硅聚合能力的研究 | 第23-35页 |
| 3．1 引言 | 第23-24页 |
| 3．2 材料与方法 | 第24-28页 |
| 3．3 结果与分析 | 第28-33页 |
| 3．3．1 水稻叶片中硅体的分离纯化 | 第28页 |
| 3．3．2 通过SDS-PAGE分离硅结合蛋白 | 第28-29页 |
| 3．3．3 SBP117氨基酸序列的测定及其同源蛋白的分析 | 第29-30页 |
| 3．3．4 硅结合蛋白(HF提取物)诱导硅沉淀形态的电镜观察 | 第30-31页 |
| 3．3．5 体外模拟硅结合蛋白催化硅聚合能力的定量测定 | 第31-32页 |
| 3．3．6 人工合成多肽的沉淀反应 | 第32-33页 |
| 3．4 讨论 | 第33-35页 |
| 第四章 水稻及其它禾本科植物体内硅结合蛋白的免疫印迹检测 | 第35-46页 |
| 4．1 引言 | 第35-36页 |
| 4．2 材料与方法 | 第36-39页 |
| 4．3 结果与分析 | 第39-45页 |
| 4．3．1 SBP117两条多肽的合成及纯化 | 第39-40页 |
| 4．3．2 多克隆抗体效价的检测 | 第40页 |
| 4．3．3 SBP117蛋白的免疫印迹检测 | 第40-41页 |
| 4．3．4 抗体对其它禾本科植物硅结合蛋白的特异性检测 | 第41-43页 |
| 4．3．5 免疫细胞定位水稻叶片中的硅结合蛋白 | 第43页 |
| 4．3．6 组织印迹 | 第43-45页 |
| 4．4 讨论 | 第45-46页 |
| 第五章 硅结合蛋白与硅提高水稻抗镉毒害的关系 | 第46-57页 |
| 5．1 引言 | 第46-47页 |
| 5．2 材料与方法 | 第47-49页 |
| 5．3 结果与分析 | 第49-55页 |
| 5．3．1 施硅对水稻幼苗生物量的影响 | 第49页 |
| 5．3．2 硅对镉在水稻地上部和地下部分布的影响 | 第49-50页 |
| 5．3．3 硅对质外体运输路径通透性的影响 | 第50页 |
| 5．3．4 硅对水稻根表皮细胞壁孔隙度的影响 | 第50-51页 |
| 5．3．5 X-射线能谱分析检测硅和镉的分布 | 第51-52页 |
| 5．3．6 质外体和共质体中镉的区域化分布 | 第52-54页 |
| 5．3．7 免疫细胞化学检测硅结合蛋白在水稻根中的分布 | 第54-55页 |
| 5．4 讨论 | 第55-57页 |
| 第六章 结论与展望 | 第57-59页 |
| 6．1 主要结论 | 第57-58页 |
| 6．2 展望 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 作者简历 | 第68页 |
