| 中文摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略语英汉对照 | 第10-12页 |
| 第一部分 文献综述 | 第12-37页 |
| 第一章 植物中的小G蛋白研究进展 | 第13-23页 |
| 1 前言 | 第13-15页 |
| 2 Rab GTPase | 第15-16页 |
| 3 Rop GTPase | 第16-18页 |
| 4 Arf GTPase | 第18-19页 |
| 5 Ran GTPase | 第19-22页 |
| 6 结论与展望 | 第22-23页 |
| 第二章 植物细胞周期相关基因的研究进展 | 第23-34页 |
| 1 细胞周期基因的结构特征 | 第24页 |
| 2 植物细胞周期相关基因 | 第24-28页 |
| 3 植物细胞周期基因的生物学功能 | 第28-31页 |
| 4 目前的植物细胞周期调控模型 | 第31-34页 |
| 第三章 博士论文立题依据与总体设计 | 第34-37页 |
| 1 研究背景 | 第34-35页 |
| 2 研究内容与技术路线 | 第35-37页 |
| 第二部分 TaRAN1基因功能研究 | 第37-124页 |
| 第一章 TaRAN1基因表达及其编码蛋白的生化特性分析 | 第38-61页 |
| 1 材料和方法 | 第38-48页 |
| 1． 1 材料 | 第38-39页 |
| 1． 2 方法 | 第39-48页 |
| 2 实验结果与分析 | 第48-59页 |
| 2． 1 TaRAN1基因的cDNA序列及蛋白序列分析 | 第48-54页 |
| 2． 2 TaRAN1基因的Southern分析和组织表达特异性分析 | 第54-55页 |
| 2． 3 瞬时表达载体的构建 | 第55-56页 |
| 2． 4 TaRAN1-GFP融合蛋白的亚细胞定位 | 第56-57页 |
| 2． 5 TaRAN1的原核表达及纯化 | 第57-58页 |
| 2． 6 TaRAN1的GTP特异性结合实验 | 第58页 |
| 2． 7 抗TaRAN1蛋白12肽抗体的制备与鉴定 | 第58-59页 |
| 3 小结 | 第59-61页 |
| 第二章 TaRAN1基因参与细胞周期调控过程 | 第61-80页 |
| 1 材料和方法 | 第61-68页 |
| 1． 1 材料 | 第61-62页 |
| 1． 2 方法 | 第62-68页 |
| 2 实验结果与分析 | 第68-78页 |
| 2． 1 酵母表达载体的构建 | 第68页 |
| 2． 2 转基因酵母的RT-PCR分析 | 第68-69页 |
| 2． 3 转基因酵母生长状况的观察 | 第69-70页 |
| 2． 4 转基因酵母的微观观察 | 第70-72页 |
| 2． 5 紫外线和微管形成抑制剂对转基因酵母细胞的影响 | 第72-73页 |
| 2． 6 酵母微管的免疫荧光观察 | 第73-75页 |
| 2． 7 流式细胞术检测酵母的细胞周期 | 第75-77页 |
| 2． 8 转基因酵母细胞的透射电镜观察 | 第77-78页 |
| 3 小结 | 第78-80页 |
| 第三章 TaRAN1基因参与生长素介导的发育过程的调控 | 第80-118页 |
| 1 材料和方法 | 第80-89页 |
| 1． 1 材料 | 第80-81页 |
| 1． 2 方法 | 第81-89页 |
| 2 实验结果与分析 | 第89-116页 |
| 2． 1 转基因水稻发育过程分析 | 第89-97页 |
| 2． 1． 1 超表达TaRAN1的水稻植株的获得 | 第89-90页 |
| 2． 1． 2 转基因水稻的分子鉴定 | 第90-92页 |
| 2． 1． 3 TaRAN1 T_2代转基因水稻发育表型 | 第92-93页 |
| 2． 1． 4 TaRAN1 T_2代转基因水稻根发育表型 | 第93-94页 |
| 2． 1． 5 TaRAN1基因的超表达植株根部显微观察 | 第94-95页 |
| 2． 1． 6 转基因细胞的有丝分裂时相分析 | 第95-97页 |
| 2． 2 转基因拟南芥的发育及其对生长素的反应 | 第97-105页 |
| 2． 2． 1 超表达TaRAN1的拟南芥植株的获得 | 第97页 |
| 2． 2． 2 转基因拟南芥的分子鉴定 | 第97-98页 |
| 2． 2． 3 TaRAN1 T_2代转基因拟南芥生长表型 | 第98-100页 |
| 2． 2． 4 TaRAN1 T_2代转基因拟南芥根生长表型 | 第100-101页 |
| 2． 2． 5 拟南芥根PI染色 | 第101-102页 |
| 2． 2． 6 扫描电镜观察拟南芥生长点 | 第102-103页 |
| 2． 2． 7 Northern分析IAA处理后TaRAN1的表达水平变化 | 第103页 |
| 2． 2． 8 HPLC测定转基因植物的生长素含量 | 第103页 |
| 2． 2． 9 不同浓度IAA处理后，测定植株的根系变化 | 第103-105页 |
| 2． 3 转基因植物对环境胁迫的反应 | 第105-110页 |
| 2． 4 利用RNAi技术研究TaRAN1的生理功能 | 第110-114页 |
| 2． 5 转基因小麦的初步观察 | 第114-116页 |
| 3 小结 | 第116-118页 |
| 第四章 讨论与分析 | 第118-124页 |
| 1 TaRAN1蛋白主要定位于细胞核 | 第118页 |
| 2 TaRAN1参与酵母细胞周期调控过程 | 第118-121页 |
| 3 TaRAN1参与植物细胞周期的G2/M转换，对生长素反应超敏感 | 第121-122页 |
| 4 TaRAN1参与调控植物胁迫反应 | 第122-123页 |
| 5 结论 | 第123-124页 |
| 附1 小麦M10基因编码一个新的GTP结合蛋白 | 第124-137页 |
| 前言 | 第125页 |
| 1 材料和方法 | 第125页 |
| 2 实验结果与分析 | 第125-135页 |
| 2． 1 M10基因的cDNA序列及蛋白序列结构预测分析 | 第125-129页 |
| 2． 2 M10的原核表达及纯化 | 第129页 |
| 2． 3 M10的GTP特异性结合实验 | 第129-130页 |
| 2． 4 抗M10蛋白抗体的制备与鉴定 | 第130-131页 |
| 2． 5 超表达和反义表达M10的水稻植株的获得 | 第131-134页 |
| 2． 6 超表达和反义表达M10的转基因拟南芥 | 第134-135页 |
| 3 小结 | 第135-137页 |
| 参考文献 | 第137-148页 |
| 在读期间发表文章情况 | 第148-149页 |
| 致谢 | 第149-150页 |
