| 中文摘要 | 第1-6页 |
| 英文摘要 | 第6-11页 |
| 1 绪论 | 第11-17页 |
| ·研究背景及国内外研究现状 | 第11-15页 |
| ·研究意义 | 第15-17页 |
| 2 Lef-1在大鼠触须毛囊周期中的表达 | 第17-25页 |
| ·引言 | 第17页 |
| ·材料与方法 | 第17-21页 |
| ·实验动物 | 第17页 |
| ·主要实验设备 | 第17-18页 |
| ·主要药品和试剂 | 第18页 |
| ·主要试剂的配制 | 第18-19页 |
| ·实验方法 | 第19-21页 |
| ·结果 | 第21-23页 |
| ·Lef-1在大鼠触须毛发周期中的表达 | 第21-22页 |
| ·RT-PCR检测Lef-1 mRNA在触须毛发周期中的表达 | 第22-23页 |
| ·讨论 | 第23-25页 |
| 3 毛囊Bulge区细胞的培养及鉴定 | 第25-34页 |
| ·引言 | 第25页 |
| ·材料与方法 | 第25-28页 |
| ·实验动物 | 第25页 |
| ·主要实验设备 | 第25-26页 |
| ·主要药品和试剂 | 第26页 |
| ·主要试剂的配制 | 第26-27页 |
| ·实验方法 | 第27-28页 |
| ·结果 | 第28-31页 |
| ·免疫组织化学检测β1.integrin、CD34两个干细胞标记分子在毛囊中的表达 | 第28-29页 |
| ·毛囊Bulge干细胞的原代培养 | 第29-30页 |
| ·毛囊Bulge区细胞的生长状况 | 第30页 |
| ·免疫细胞化学检测干细胞特异性标志物β1.integrin、CD34、α6.integrin及分化标志物K10在毛囊Bulge干细胞的表达 | 第30-31页 |
| ·免疫细胞化学检测特异性增殖标志物Ki67 | 第31页 |
| ·讨论 | 第31-34页 |
| 4 毛囊Bulge干细胞体外诱导微环境的建立 | 第34-43页 |
| ·引言 | 第34页 |
| ·材料与方法 | 第34-38页 |
| ·实验动物 | 第34页 |
| ·主要实验设备 | 第34-35页 |
| ·主要药品和试剂 | 第35-36页 |
| ·主要试剂的配制 | 第36页 |
| ·实验方法 | 第36-38页 |
| ·结果 | 第38-40页 |
| ·毛乳头细胞的培养及鉴定 | 第38-39页 |
| ·诱导分化结果的鉴定 | 第39-40页 |
| ·讨论 | 第40-43页 |
| 5 Lef-1在毛囊Bulge干细胞诱导分化中可能作用的初步研究 | 第43-53页 |
| ·引言 | 第43页 |
| ·材料与方法 | 第43-47页 |
| ·主要实验设备 | 第43-44页 |
| ·主要药品和试剂 | 第44页 |
| ·主要试剂的配制 | 第44页 |
| ·实验方法 | 第44-47页 |
| ·结果 | 第47-50页 |
| ·免疫细胞化学鉴定诱导前后Lef-1及相关因子在毛囊Bulge干细胞中的表达 | 第47-49页 |
| ·RT-PCR检测诱导前后Lef-1的表达 | 第49-50页 |
| ·讨论 | 第50-53页 |
| 6 Lef-1基因及N端突变Lef-1基因对毛囊Bulge干细胞影响的初步研究 | 第53-64页 |
| ·引言 | 第53页 |
| ·材料与方法 | 第53-58页 |
| ·主要实验设备 | 第53-54页 |
| ·主要药品和试剂 | 第54页 |
| ·主要试剂的配制 | 第54页 |
| ·实验方法 | 第54-58页 |
| ·结果 | 第58-61页 |
| ·大鼠Lef-1基因全长及N端截短基因的获得 | 第58-59页 |
| ·Lef-1.GFP及NLef-1.GFP质粒的获得 | 第59页 |
| ·测序结果 | 第59页 |
| ·Lef-1基因转染后β-catenin在毛囊Bulge干细胞中的表达 | 第59-60页 |
| ·Lef-1基因转染后毛发分化标志物k6在毛囊Bulge干细胞中的表达 | 第60-61页 |
| ·讨论 | 第61-64页 |
| 7 结论与展望 | 第64-66页 |
| ·全文总结 | 第64页 |
| ·展望 | 第64-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-74页 |
| 附录: 作者在攻读硕士学位期间发表的论文目录 | 第74-75页 |
