| 中文摘要 | 第1-11页 |
| 英文摘要 | 第11-13页 |
| 1 引言 | 第13-31页 |
| ·被子植物种子的发育 | 第13-17页 |
| ·被子植物胚的发育 | 第14-15页 |
| ·被子植物胚乳的发育 | 第15-16页 |
| ·被子植物种皮的发育 | 第16-17页 |
| ·影响种子发育的因素 | 第17-22页 |
| ·影响胚发育的因素 | 第17-18页 |
| ·影响胚乳发育的因素 | 第18-19页 |
| ·无融合生殖与种子发育 | 第19-20页 |
| ·基因组印迹与种子发育 | 第20-22页 |
| ·控制种子大小的遗传机制 | 第22-27页 |
| ·IKU 途径对种子大小的控制 | 第22-23页 |
| ·TTG2 途径对种子大小的控制 | 第23-24页 |
| ·IKU 途径和TTG2 途径互作控制种子的大小 | 第24-25页 |
| ·AP2 途径对种子大小的控制 | 第25-26页 |
| ·控制种子大小的模型 | 第26-27页 |
| ·细胞数目和细胞大小决定种子的大小 | 第27-28页 |
| ·SHB1 基因 | 第28-30页 |
| ·SHB1 基因的克隆 | 第28-29页 |
| ·SHB1 基因的定位与已知功能 | 第29-30页 |
| ·本研究的目的与意义 | 第30-31页 |
| 2 材料与方法 | 第31-53页 |
| ·实验材料 | 第31-32页 |
| ·植物材料 | 第31页 |
| ·菌株与质粒 | 第31页 |
| ·酶及生化试剂 | 第31页 |
| ·PCR引物 | 第31-32页 |
| ·实验方法 | 第32-53页 |
| ·植物基因组DNA 的提取 | 第32-33页 |
| ·植物组织总RNA 的提取及检测 | 第33-35页 |
| ·反转录cDNA 第一链的合成 | 第35页 |
| ·PCR 扩增 | 第35-36页 |
| ·连接反应 | 第36页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备和转化 | 第36-37页 |
| ·碱法小量质粒DNA 的提取 | 第37-38页 |
| ·质粒DNA 的酶切鉴定 | 第38页 |
| ·DNA 序列测定 | 第38-39页 |
| ·目的片段的回收 | 第39页 |
| ·根癌农杆菌GV3101 感受态细胞的制备与转化 | 第39-40页 |
| ·pSHB1::GUS 表达载体的构建 | 第40-41页 |
| ·拟南芥的栽培、转化及分析 | 第41-42页 |
| ·微分干涉差显微照相分析 | 第42-44页 |
| ·原位杂交 | 第44-50页 |
| ·GUS 染色分析 | 第50-51页 |
| ·花粉粒体外萌发实验 | 第51页 |
| ·半薄切片的制作 | 第51-53页 |
| 3 结果与分析 | 第53-69页 |
| ·shb1-D 与shb1-L 突变体种子的表型分析 | 第53-54页 |
| ·突变体成熟胚细胞大小与细胞数目的分析 | 第54-59页 |
| ·shb1-D 成熟胚细胞大小与细胞数目的分析 | 第54-56页 |
| ·shb1-L 成熟胚细胞大小与细胞数目的分析 | 第56-59页 |
| ·突变体种子发育进程的分析 | 第59-63页 |
| ·shb1-D 突变体种子的发育时期延迟 | 第59-61页 |
| ·shb1-L 突变体种子发育时期与野生型基本一致 | 第61-63页 |
| ·SHB1 基因在不同器官中的表达分析 | 第63-64页 |
| ·SHB1 基因在种子中的时空表达分析 | 第64-66页 |
| ·shb1-D 突变体胚乳的细胞化延迟 | 第66-69页 |
| ·授粉后shb1-D 突变体胚乳的细胞化延迟 | 第66-67页 |
| ·胚发育shb1-D 突变体胚乳的细胞化延迟 | 第67-69页 |
| 4 讨论 | 第69-73页 |
| ·SHB1基因促进细胞的分裂与扩张 | 第69-70页 |
| ·shb1-L突变体表型不明显可能与存在同源基因有关 | 第70页 |
| ·SHB1基因过量表达使种子的发育时间延长 | 第70页 |
| ·SHB1基因在拟南芥植株的多种器官中表达 | 第70-71页 |
| ·胚乳细胞化延迟使shb1-D突变体种子变大 | 第71页 |
| ·SHB1基因通过IKU途径参与对种子大小的调控 | 第71-73页 |
| 5 结论 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-83页 |
| 附录 | 第83-90页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第90-91页 |
| 致谢 | 第91页 |
