| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 研究现状、成果 | 第13-14页 |
| 研究目的、方法 | 第14-15页 |
| 一、大鼠BMSCs的分离、培养、鉴定及分化潜能的研究 | 第15-33页 |
| ·对象和方法 | 第15-22页 |
| ·实验动物 | 第15页 |
| ·实验仪器 | 第15-16页 |
| ·实验试剂、耗材 | 第16-17页 |
| ·实验方法 | 第17-22页 |
| ·结果 | 第22-27页 |
| ·大鼠BMSC的提取、分离和培养观察 | 第22-23页 |
| ·大鼠BMSC表面标记的测定 | 第23页 |
| ·流式细胞技术检测体外培养大鼠BMSC细胞周期变化 | 第23-24页 |
| ·体外培养大鼠BMSC向神经细胞方向分化的检测 | 第24-25页 |
| ·体外培养大鼠BMSC向成骨样细胞和脂肪样细胞分化的检测 | 第25-26页 |
| ·软琼脂克隆形成实验检测体外培养BMSC的成瘤性 | 第26-27页 |
| ·讨论 | 第27-32页 |
| ·小结 | 第32-33页 |
| 二、Ad5-BDNF转染永生化BMSC的表达及其生物学活性研究 | 第33-56页 |
| ·对象和方法 | 第33-44页 |
| ·实验细胞及质粒 | 第33-34页 |
| ·实验仪器 | 第34页 |
| ·实验试剂、耗材 | 第34-35页 |
| ·实验方法 | 第35-44页 |
| ·结果 | 第44-50页 |
| ·ELISA法检测转染pLXSN-S-hTERT后BMSC的端粒酶活性 | 第44-45页 |
| ·激光共聚焦免疫荧光检测转染Ad5-BDNF的永生化BMSC | 第45-46页 |
| ·Real-time PCR检测转染Ad5-BDNF的永生化BMSC | 第46-47页 |
| ·转染Ad5-BDNF的永生化BMSC外分泌BDNF的表达水平检测 | 第47-48页 |
| ·体外损伤神经元外分泌乳酸脱氢酶的测定 | 第48页 |
| ·流式细胞技术检测体外与Ad-BDNF-hTERT-BMSCs共培养的损伤神经元的凋亡情况 | 第48-50页 |
| ·讨论 | 第50-55页 |
| ·小结 | 第55-56页 |
| 三、转染BDNF的永生化BMSC治疗大鼠液压颅脑损伤的研究 | 第56-79页 |
| ·对象和方法 | 第56-66页 |
| ·实验动物 | 第56页 |
| ·实验仪器 | 第56-57页 |
| ·实验试剂、耗材 | 第57-58页 |
| ·实验方法 | 第58-66页 |
| ·结果 | 第66-73页 |
| ·大鼠中度液压颅脑损伤模型的制备 | 第66-67页 |
| ·立体定向辅助下移植实验细胞至脑损伤组织 | 第67页 |
| ·Western-blot检测损伤脑组织的BDNF表达量 | 第67-68页 |
| ·移植后大鼠的生物学行为及疗效评价 | 第68-73页 |
| ·讨论 | 第73-78页 |
| ·小结 | 第78-79页 |
| 全文结论 | 第79-80页 |
| 论文创新点 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-89页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第89-90页 |
| 综述 骨髓间充质干细胞治疗颅脑创伤研究进展 | 第90-99页 |
| 综述参考文献 | 第95-99页 |
| 致谢 | 第99-100页 |
