| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 英文缩略语表 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-17页 |
| 第一部分 ：CGF对骨髓间充质干细胞生物学特性影响的体外研究 | 第17-44页 |
| 实验一 CGF对 BMSCs增殖与凋亡的影响 | 第18-32页 |
| 1 主要实验材料与仪器 | 第18-19页 |
| 2 实验方法 | 第19-24页 |
| 2.1 大鼠BMSCs的获取、培养 | 第19-20页 |
| 2.2 CGF提取液的制备 | 第20-21页 |
| 2.3 BMSCs表面干细胞标志物的鉴定 | 第21页 |
| 2.4 BMSCs克隆集落形成能力 | 第21-22页 |
| 2.5 BMSCs成脂分化的鉴定 | 第22页 |
| 2.6 BMSCs成骨分化的鉴定 | 第22-23页 |
| 2.7 BMSCs细胞增殖能力检测 | 第23页 |
| 2.8 缺氧条件诱导下,BMSCs凋亡检测 | 第23-24页 |
| 2.9 活/死细胞染色 | 第24页 |
| 2.10 统计学分析 | 第24页 |
| 3 实验结果 | 第24-30页 |
| 3.1 大鼠BMSCs的细胞形态 | 第24-25页 |
| 3.2 BMSCs表面干细胞标志物鉴定结果 | 第25-26页 |
| 3.3 BMSCs克隆集落形成结果 | 第26-27页 |
| 3.4 BMSCs成脂分化鉴定结果 | 第27页 |
| 3.5 BMSCs成骨分化鉴定结果 | 第27页 |
| 3.6 BMSCs细胞增殖能力检测结果 | 第27-29页 |
| 3.7 BMSCs凋亡检测结果 | 第29页 |
| 3.8 BMSCs活/死细胞染色结果 | 第29-30页 |
| 4 结论 | 第30-32页 |
| 实验二 CGF对 BMSCs成骨分化影响的体外研究 | 第32-44页 |
| 1 主要实验材料与仪器 | 第32-33页 |
| 2 实验方法 | 第33-37页 |
| 2.1 碱性磷酸酶(ALP)染色及半定量检测 | 第33-34页 |
| 2.2 茜素红(ARS)染色 | 第34页 |
| 2.3 Von Kossa染色 | 第34-35页 |
| 2.4 Real-time PCR检测成骨相关基因的表达 | 第35-36页 |
| 2.5 Western blot检测成骨相关蛋白的表达 | 第36页 |
| 2.6 统计学分析 | 第36-37页 |
| 3 结果 | 第37-42页 |
| 3.1 碱性磷酸酶(ALP)染色及半定量检测结果 | 第37-38页 |
| 3.2 茜素红(ARS)染色结果 | 第38页 |
| 3.3 Von Kossa染色结果 | 第38-39页 |
| 3.4 Real-time PCR检测成骨相关基因的表达结果 | 第39-41页 |
| 3.5 Western blot检测成骨相关蛋白的表达结果 | 第41-42页 |
| 4 结论 | 第42-44页 |
| 第二部分 ：CGF与骨髓间充质干细胞修复骨缺损效果的体内研究 | 第44-59页 |
| 实验一 自体浓缩生长因子纤维蛋白支架材料制备及其结构观察 | 第46-51页 |
| 1 主要实验材料与仪器 | 第46-47页 |
| 2 实验方法 | 第47-49页 |
| 2.1 大鼠BMSCs的获取、培养 | 第47-48页 |
| 2.2 CGF的制备 | 第48页 |
| 2.3 CGF与 BMSCs共培养 | 第48页 |
| 2.4 生物支架材料电镜检测 | 第48-49页 |
| 2.5 统计学分析 | 第49页 |
| 3 结果 | 第49-50页 |
| 3.1 生物支架材料电镜检测结果 | 第49-50页 |
| 4 结论 | 第50-51页 |
| 实验二 CGF与骨髓间充质干细胞修复骨缺损效果的体内研究 | 第51-59页 |
| 1 主要实验材料与仪器 | 第51-52页 |
| 2 实验方法 | 第52-55页 |
| 2.1 动物骨缺损模型的建立 | 第52-54页 |
| 2.2 Micro-CT影像检测及三维成像 | 第54页 |
| 2.3 组织学检测 | 第54页 |
| 2.4 统计学分析 | 第54-55页 |
| 3 结果 | 第55-57页 |
| 3.1 Micro-CT影像检测及三维成像结果 | 第55-56页 |
| 3.2 组织学检测结果 | 第56-57页 |
| 4 结论 | 第57-59页 |
| 第三部分 全文总结 | 第59-60页 |
| 第四部分 参考文献 | 第60-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 在读期间发表文章与所获奖项 | 第67页 |
