| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第15-26页 |
| 1.1 蓝靛果概述 | 第15-16页 |
| 1.2 蓓蕾蓝靛果概述 | 第16页 |
| 1.3 花色苷概述及研究发展趋势 | 第16-18页 |
| 1.4 蓝靛果花色苷研究现状及发展趋势 | 第18-22页 |
| 1.4.1 蓝靛果花色苷的检测方法研究现状 | 第18页 |
| 1.4.2 蓝靛果花色苷的提取技术研究现状 | 第18-19页 |
| 1.4.3 蓝靛果花色苷的分离纯化研究现状 | 第19页 |
| 1.4.4 蓝靛果花色苷的稳定性研究现状 | 第19页 |
| 1.4.5 蓝靛果花色苷抗氧化功能研究现状 | 第19-20页 |
| 1.4.6 蓝靛果花色苷降血脂功能研究现状 | 第20页 |
| 1.4.7 蓝靛果花色苷抗肿瘤功能研究现状 | 第20页 |
| 1.4.8 蓝靛果花色苷分离鉴定研究现状 | 第20-21页 |
| 1.4.9 蓝靛果发展趋势 | 第21-22页 |
| 1.5 天然产物抗肿瘤活性筛选方法 | 第22-23页 |
| 1.5.1 MTT比色分析法 | 第22页 |
| 1.5.2 诱导细胞凋亡法 | 第22页 |
| 1.5.3 靶点筛选法 | 第22-23页 |
| 1.5.4 动物移植性实验法 | 第23页 |
| 1.6 研究目的及意义 | 第23页 |
| 1.7 研究内容 | 第23-26页 |
| 1.7.1 蓓蕾蓝靛果花色苷超声逆流提取工艺研究 | 第23-24页 |
| 1.7.2 蓓蕾蓝靛果花色苷分离纯化及结构分析研究 | 第24页 |
| 1.7.3 蓓蕾蓝靛果花色苷体外抗癌活性组分筛选及活性研究 | 第24页 |
| 1.7.4 蓓蕾蓝靛果花色苷体内抗肿瘤活性研究 | 第24-25页 |
| 1.7.5 技术路线图 | 第25-26页 |
| 2 蓓蕾花色苷超声波逆流提取工艺研究 | 第26-44页 |
| 2.1 引言 | 第26-27页 |
| 2.2 实验材料 | 第27页 |
| 2.2.1 原料 | 第27页 |
| 2.2.2 试剂 | 第27页 |
| 2.2.3 仪器 | 第27页 |
| 2.3 试验方法 | 第27-31页 |
| 2.3.1 原料处理方法 | 第27页 |
| 2.3.2 花色苷测定方法 | 第27-28页 |
| 2.3.3 超声波逆流提取实验设计方法 | 第28-31页 |
| 2.3.4 统计分析方法 | 第31页 |
| 2.4 结果与分析 | 第31-42页 |
| 2.4.1 蓓蕾花色苷提取单因素实验结果与分析 | 第31-36页 |
| 2.4.2 蓓蕾花色苷提取响应面法试验结果与分析 | 第36-41页 |
| 2.4.3 蓓蕾花色苷超声逆流提取结果与分析 | 第41-42页 |
| 2.5 讨论 | 第42-43页 |
| 2.6 本章小结 | 第43-44页 |
| 3 蓓蕾花色苷分离纯化及结构分析 | 第44-59页 |
| 3.1 引言 | 第44-45页 |
| 3.2 试验材料 | 第45-46页 |
| 3.2.1 原料 | 第45页 |
| 3.2.2 试剂 | 第45页 |
| 3.2.3 仪器 | 第45-46页 |
| 3.3 试验方法 | 第46-57页 |
| 3.3.1 蓓蕾花色苷最大吸收峰确定方法 | 第46页 |
| 3.3.2 蓓蕾花色苷分离纯化固定相介质的筛选 | 第46-48页 |
| 3.3.3 流动相介质优化 | 第48页 |
| 3.3.4 花色苷组分制备方法 | 第48页 |
| 3.3.5 花色苷组分纯度评价方法 | 第48-49页 |
| 3.3.6 高效液相色谱法分析蓓蕾蓝靛果花色苷结构 | 第49页 |
| 3.3.7 蓓蕾花色苷最大吸收峰的确定 | 第49-50页 |
| 3.3.8 蓓蕾花色苷固定相介质筛选 | 第50-53页 |
| 3.3.9 流动相介质的优化 | 第53-54页 |
| 3.3.10 蓓蕾花色苷组分的制备及纯度评价 | 第54-55页 |
| 3.3.11 高效液相色谱法分析蓓蕾花色昔B2组分结构 | 第55-57页 |
| 3.4 讨论 | 第57-58页 |
| 3.5 本章小结 | 第58-59页 |
| 4 蓓蕾花色苷体外抗肿瘤组分筛选及活性研究 | 第59-77页 |
| 4.1 引言 | 第59页 |
| 4.2 试验材料 | 第59-60页 |
| 4.2.1 原料 | 第59-60页 |
| 4.2.2 试剂 | 第60页 |
| 4.2.3 仪器 | 第60页 |
| 4.3 试验方法 | 第60-62页 |
| 4.3.1 细胞增殖活性研究方法 | 第60-61页 |
| 4.3.2 细胞超微结构观测方法 | 第61页 |
| 4.3.3 细胞形态观察方法 | 第61页 |
| 4.3.4 细胞凋亡率研究方法 | 第61页 |
| 4.3.5 细胞周期阻滞研究方法 | 第61-62页 |
| 4.4 结果与分析 | 第62-73页 |
| 4.4.1 蓓蕾花色苷抑制肿瘤作用敏感细胞株筛选 | 第62-63页 |
| 4.4.2 蓓蕾花色苷抑制SMMC-7721细胞增殖作用高活性组分筛选 | 第63-64页 |
| 4.4.3 蓓蕾花色苷组分B2作用时间对SMMC-7721细胞增殖活性影响 | 第64-65页 |
| 4.4.4 蓓蕾花色苷组分B2对SMMC-7721细胞超微结构的影响 | 第65-67页 |
| 4.4.5 蓓蕾花色苷组分B2对SMMC-7721细胞形态的影响 | 第67-69页 |
| 4.4.6 蓓蕾花色苷组分B2对肿瘤DNA损伤的影响 | 第69-71页 |
| 4.4.7 蓓蕾花色苷组分B2对SMMC-7721细胞周期的影响 | 第71-73页 |
| 4.5 讨论 | 第73-75页 |
| 4.6 本章小结 | 第75-77页 |
| 5 蓓蕾花色苷对H22荷瘤小鼠肿瘤抑制作用研究 | 第77-93页 |
| 5.1 引言 | 第77页 |
| 5.2 试验材料 | 第77-78页 |
| 5.2.1 原料 | 第77页 |
| 5.2.2 试剂 | 第77-78页 |
| 5.2.3 仪器 | 第78页 |
| 5.2.4 实验动物 | 第78页 |
| 5.3 方法 | 第78-79页 |
| 5.3.1 动物建模方法 | 第78页 |
| 5.3.2 分组与给药 | 第78-79页 |
| 5.3.3 指标测定 | 第79页 |
| 5.3.4 数据统计分析 | 第79页 |
| 5.4 结果与分析 | 第79-88页 |
| 5.4.1 蓓蕾花色苷组分B2对H22小鼠外观特征的影响 | 第79-80页 |
| 5.4.2 蓓蕾花色苷组分B2对H22小鼠体质量的影响 | 第80-81页 |
| 5.4.3 蓓蕾花色苷B2对H22小鼠脏器比的影响 | 第81-82页 |
| 5.4.4 蓓蕾花色苷组分B2对H22小鼠肿瘤抑制作用 | 第82-83页 |
| 5.4.5 蓓蕾花色苷组分B2对H22小鼠抗氧化能力的影响 | 第83-85页 |
| 5.4.6 蓓蕾花色苷B2对H22小鼠免疫细胞因子IL-2水平的影响 | 第85-86页 |
| 5.4.7 蓓蕾花色苷B2对H22小鼠干扰素IFN-γ水平的影响 | 第86-87页 |
| 5.4.8 蓓蕾花色苷B2对H22小鼠肿瘤坏死因子TNF-α水平的影响 | 第87-88页 |
| 5.5 相关性分析 | 第88-91页 |
| 5.5.1 抗氧化指标与抑瘤作用相关性分析 | 第88-89页 |
| 5.5.2 细胞因子水平与抑瘤率相关性分析 | 第89-91页 |
| 5.6 讨论 | 第91页 |
| 5.7 本章小结 | 第91-93页 |
| 结论 | 第93-94页 |
| 参考文献 | 第94-101页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第101-102页 |
| 致谢 | 第102-103页 |
