| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 缩略词 | 第10-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-24页 |
| 1 水稻分蘖的研究进展 | 第15-18页 |
| 1.1 水稻分蘖的发生 | 第15-16页 |
| 1.2 水稻分蘖发生的分子机制研究进展 | 第16-18页 |
| 2 水稻富亮氨酸重复类受体激酶LRK2 | 第18页 |
| 3 植物真核翻译延伸因子eEF1A研究进展 | 第18-19页 |
| 4 植物基因功能研究的策略 | 第19-23页 |
| 4.1 过表达和RNAi干扰 | 第20-21页 |
| 4.2 植物转基因技术 | 第21-22页 |
| 4.3 酵母双杂交 | 第22-23页 |
| 5 本研究的目的和意义 | 第23-24页 |
| 第二章 过表达OsEF1A转基因后代的农艺学性状 | 第24-30页 |
| 1 前言 | 第24页 |
| 2 材料及试剂 | 第24-25页 |
| 2.1 实验材料 | 第24页 |
| 2.2 实验试剂 | 第24-25页 |
| 3 实验方法 | 第25-27页 |
| 3.1 过表达OsEF1A的转基因T_2代的阳性鉴定 | 第25页 |
| 3.2 水稻农艺学性状的统计 | 第25页 |
| 3.3 实时荧光定量PCR(qRT-PCR) | 第25-27页 |
| 4 结果与分析 | 第27-29页 |
| 4.1 过表达OsEF1A的转基因T_2代的阳性鉴定筛选 | 第27-28页 |
| 4.2 过表达OsEF1A植株的表型特征及主要农艺学性状分析 | 第28-29页 |
| 5 讨论 | 第29-30页 |
| 第三章 过表达OsEF1A株系水稻对非生物胁迫的应答 | 第30-34页 |
| 1 前言 | 第30页 |
| 2 材料及试剂 | 第30-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第30页 |
| 2.2 实验试剂 | 第30-31页 |
| 3 实验方法 | 第31页 |
| 3.1 水稻种子的萌发 | 第31页 |
| 3.2 非生物胁迫处理水稻幼苗 | 第31页 |
| 4 结果分析 | 第31-33页 |
| 4.1 过表达OsEF1A植株对非生物胁迫的应答 | 第31-33页 |
| 5 讨论 | 第33-34页 |
| 第四章 LRK2下游互作基因的功能初探 | 第34-41页 |
| 1 前言 | 第34页 |
| 2 材料及试剂 | 第34-35页 |
| 2.1 实验材料 | 第34页 |
| 2.2 实验试剂 | 第34-35页 |
| 3 实验方法 | 第35-38页 |
| 3.1 酵母双杂交引物的设计 | 第35页 |
| 3.2 酵母双杂交实验 | 第35-36页 |
| 3.2.1 酵母感受态细胞的制备 | 第35-36页 |
| 3.2.2 酵母转化 | 第36页 |
| 3.3 LRK2下游互作基因OsSOD、OsCSN的过表达载体构建 | 第36-38页 |
| 4 结果分析 | 第38-40页 |
| 4.1 酵母双杂交 | 第38-39页 |
| 4.2 OsSOD、OsCSN的过表达载体构建 | 第39-40页 |
| 5 讨论 | 第40-41页 |
| 第五章 文献综述 | 第41-51页 |
| 1 叶色突变体的类型和来源 | 第41-44页 |
| 1.1 叶色突变体的类型 | 第41-42页 |
| 1.2 水稻叶色突变体的来源 | 第42-44页 |
| 1.2.1 自然突变 | 第42-43页 |
| 1.2.2 人工诱变 | 第43页 |
| 1.2.3 插入突变 | 第43-44页 |
| 2 水稻叶色相关基因的克隆研究进展 | 第44-46页 |
| 3 水稻叶色相关突变体的分子机制研究进展 | 第46-48页 |
| 3.1 叶绿素的生物合成与降解途径 | 第46页 |
| 3.2 叶绿体的形成与发育过程 | 第46-47页 |
| 3.3 核质信号传导途径 | 第47-48页 |
| 3.4 其他生物合成代谢途径 | 第48页 |
| 4 水稻叶色突变体的应用价值 | 第48-50页 |
| 4.1 叶色突变体在生物学理论研究中的应用 | 第48-49页 |
| 4.2 水稻叶色突变体在农业生产实践中的应用 | 第49-50页 |
| 5 本研究的目的和意义 | 第50-51页 |
| 第六章 水稻YGL15的表达模式 | 第51-57页 |
| 1 前言 | 第51页 |
| 2 材料及试剂 | 第51-52页 |
| 2.1 实验材料 | 第51页 |
| 2.2 实验试剂及仪器 | 第51-52页 |
| 3 实验方法 | 第52-54页 |
| 3.1 实时荧光定量PCR(qRT-PCR) | 第52页 |
| 3.2 水稻T1代转基因植株的阳性鉴定 | 第52页 |
| 3.3 GUS染色 | 第52-54页 |
| 4 结果与分析 | 第54-56页 |
| 4.1 水稻YGL15的表达模式 | 第54-55页 |
| 4.2 水稻YGL15的组织特异性表达分析 | 第55-56页 |
| 5 讨论 | 第56-57页 |
| 第七章 水稻YGL15的亚细胞定位 | 第57-66页 |
| 1 前言 | 第57页 |
| 2 材料与试剂 | 第57-58页 |
| 2.1 实验材料、质粒及菌种 | 第57页 |
| 2.2 实验试剂 | 第57-58页 |
| 3 实验方法 | 第58-61页 |
| 3.1 水稻DNA的提取 | 第58-59页 |
| 3.3 载体构建 | 第59页 |
| 3.5 农杆菌(EHA105)的转化 | 第59页 |
| 3.6 农杆菌(EHA105)介导水稻转基因 | 第59-60页 |
| 3.7 T_1代转基因株系的阳性鉴定 | 第60页 |
| 3.8 农杆菌(GV3101)介导的烟叶表皮细胞转化 | 第60-61页 |
| 4 结果与分析 | 第61-65页 |
| 4.1 p1300 ×35s: YGL15::eGFP载体的构建 | 第61-62页 |
| 4.2 水稻遗传转化 | 第62-63页 |
| 4.3 水稻YGL15的亚细胞定位分析 | 第63-65页 |
| 5 讨论 | 第65-66页 |
| 第八章 水稻YGL15的功能分析 | 第66-75页 |
| 1 前言 | 第66页 |
| 2 材料及试剂 | 第66页 |
| 2.1 实验材料 | 第66页 |
| 2.2 实验试剂与仪器 | 第66页 |
| 3 实验方法 | 第66-69页 |
| 3.1 水稻农艺学性状的统计 | 第66-67页 |
| 3.2 水稻叶片光合色素含量的测定 | 第67页 |
| 3.3 水稻叶片叶绿体发育的透射电镜观察 | 第67页 |
| 3.4 实时荧光定量PCR(qRT-PCR) | 第67-69页 |
| 4 结果与分析 | 第69-74页 |
| 4.1 水稻黄绿叶突变体ygl15的表型特征及主要农艺学性状分析 | 第69-72页 |
| 4.2 水稻黄绿叶突变体ygl15的透射电镜观察 | 第72-73页 |
| 4.3 叶绿体发育及光合作用相关基因的表达分析 | 第73-74页 |
| 5 讨论 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-87页 |
| 附录 | 第87-89页 |
| 1 抗生素、激素以及主要药品母液配制方法 | 第87页 |
| 2 培养基配方 | 第87-89页 |
| 2.1 LB培养基配方: | 第87-88页 |
| 2.2 组培过程中涉及的培养基配方 | 第88-89页 |
| 致谢 | 第89-90页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第90-92页 |
