| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 前言 | 第12-13页 |
| 第一章 中药抗肿瘤机制和减轻顺铂肾毒性机制研究概况 | 第13-17页 |
| 1.1 中药抗肿瘤机制研究 | 第13-14页 |
| 1.1.1 诱导肿瘤细胞凋亡 | 第13页 |
| 1.1.2 抑制肿瘤细胞的侵袭和转移 | 第13-14页 |
| 1.1.3 改善机体免疫功能 | 第14页 |
| 1.1.4 抑制肿瘤端粒酶活性 | 第14页 |
| 1.2 中药减轻CDDP肾毒性的机制研究 | 第14-16页 |
| 1.2.1 CDDP肾毒性的病理机制 | 第14页 |
| 1.2.2 CDDP诱导的肾毒性的分子机制 | 第14-16页 |
| 1.3 展望 | 第16-17页 |
| 第二章 花鹿茸水溶性有效部位的提取 | 第17-21页 |
| 2.1 实验用品 | 第17页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第17页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第17页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第17页 |
| 2.2 实验方法 | 第17-19页 |
| 2.2.1 花鹿茸水溶性总蛋白和总多糖的提取 | 第17-18页 |
| 2.2.2 Bradford法测定鹿茸水溶性蛋白含量 | 第18-19页 |
| 2.2.3 苯酚-硫酸法测定鹿茸水溶性多糖含量 | 第19页 |
| 2.3 实验结果 | 第19-20页 |
| 2.3.1 BSA标准曲线 | 第19-20页 |
| 2.3.2 葡萄糖标准曲线 | 第20页 |
| 2.3.3 鹿茸水溶性蛋白和多糖的纯度 | 第20页 |
| 2.4 讨论 | 第20-21页 |
| 第三章 花鹿茸总蛋白和总多糖与顺铂联用的体外抗肿瘤活性的研究 | 第21-27页 |
| 3.1 实验用品 | 第21-22页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第21页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第21页 |
| 3.1.3 实验试剂 | 第21-22页 |
| 3.2 实验方法 | 第22-23页 |
| 3.2.1 样品溶液的配制 | 第22页 |
| 3.2.2 抗肿瘤活性的筛选 | 第22页 |
| 3.2.3 平板克隆实验 | 第22页 |
| 3.2.4 流式细胞实验 | 第22-23页 |
| 3.2.5 Western蛋白印迹法测定凋亡相关蛋白的表达 | 第23页 |
| 3.2.6 统计学分析 | 第23页 |
| 3.3 实验结果 | 第23-26页 |
| 3.3.1 花鹿茸总蛋白和总多糖的体外抗肿瘤活性的影响 | 第23-24页 |
| 3.3.2 花鹿茸总蛋白对PC-3M细胞增殖的影响 | 第24页 |
| 3.3.3 花鹿茸总蛋白对PC-3M细胞凋亡的影响 | 第24-26页 |
| 3.4 讨论 | 第26-27页 |
| 第四章 花鹿茸总蛋白减轻顺铂诱导HEK293细胞毒性的研究 | 第27-34页 |
| 4.1 实验用品 | 第27-28页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第27页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第27页 |
| 4.1.3 实验试剂 | 第27-28页 |
| 4.2 实验内容 | 第28-29页 |
| 4.2.1 样品溶液的配制 | 第28页 |
| 4.2.2 细胞活力的测定 | 第28页 |
| 4.2.3 氧化应激指标的测定 | 第28页 |
| 4.2.4 炎症因子的测定 | 第28页 |
| 4.2.5 Western蛋白印迹法测定凋亡相关蛋白的表达 | 第28-29页 |
| 4.2.6 TUNEL法检测细胞凋亡 | 第29页 |
| 4.2.7 统计学分析 | 第29页 |
| 4.3 实验结果 | 第29-33页 |
| 4.3.1 花鹿茸总蛋白联合顺铂对HEK293细胞活力的影响 | 第29-30页 |
| 4.3.2 花鹿茸总蛋白对顺铂诱导的细胞氧化应激反应的影响 | 第30-31页 |
| 4.3.3 花鹿茸总蛋白对顺铂诱导的细胞炎症反应的影响 | 第31页 |
| 4.3.4 花鹿茸总蛋白对顺铂诱导的细胞凋亡反应的影响 | 第31-33页 |
| 4.4 讨论 | 第33-34页 |
| 第五章 花鹿茸总蛋白减轻顺铂诱导的小鼠肾毒性的研究 | 第34-44页 |
| 5.1 实验用品 | 第34-35页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第34页 |
| 5.1.2 实验仪器 | 第34页 |
| 5.1.3 实验试剂 | 第34-35页 |
| 5.2 实验内容 | 第35-37页 |
| 5.2.1 样品溶液的配制 | 第35页 |
| 5.2.2 实验动物分组和给药 | 第35页 |
| 5.2.3 小鼠体质量变化、肾重指数和肾功能测定 | 第35页 |
| 5.2.4 氧化应激指标的测定 | 第35-36页 |
| 5.2.5 ELISA测定血清和肾脏中TNF-α和IL-6的水平 | 第36页 |
| 5.2.6 Western蛋白印迹法检测细胞凋亡相关蛋白的表达 | 第36页 |
| 5.2.7 HE染色观察组织病理学变化 | 第36页 |
| 5.2.8 统计学处理 | 第36-37页 |
| 5.3 实验结果 | 第37-43页 |
| 5.3.1 花鹿茸总蛋白对顺铂诱导小鼠体质量变化、肾重指数及肾功能的影响 | 第37-38页 |
| 5.3.2 花鹿茸总蛋白对顺铂诱导氧化应激反应的影响 | 第38-39页 |
| 5.3.3 花鹿茸总蛋白对TNF-α和IL-6水平的影响 | 第39-40页 |
| 5.3.4 花鹿茸总蛋白对顺铂诱导细胞凋亡的影响 | 第40-41页 |
| 5.3.5 花鹿茸总蛋白对顺铂诱导肾组织病理学变化的影响 | 第41-43页 |
| 5.4 讨论 | 第43-44页 |
| 第六章 花鹿茸蛋白的体内安全性实验评价 | 第44-48页 |
| 6.1 实验用品 | 第44页 |
| 6.1.1 实验材料 | 第44页 |
| 6.1.2 实验仪器 | 第44页 |
| 6.1.3 实验试剂 | 第44页 |
| 6.2 实验内容 | 第44-45页 |
| 6.2.1 急性口服毒性实验 | 第44-45页 |
| 6.2.2 骨髓微核实验 | 第45页 |
| 6.2.3 精子畸变实验 | 第45页 |
| 6.2.4 统计学分析 | 第45页 |
| 6.3 实验结果 | 第45-47页 |
| 6.3.1 花鹿茸总蛋白的急性口服毒性实验结果 | 第45-46页 |
| 6.3.2 花鹿茸总蛋白的骨髓微核实验结果 | 第46-47页 |
| 6.3.3 花鹿茸总蛋白的精子畸变实验结果 | 第47页 |
| 6.4 讨论 | 第47-48页 |
| 结论 | 第48-50页 |
| 参考文献 | 第50-54页 |
| 作者简介 | 第54-56页 |
| 致谢 | 第56页 |
