| 摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 符号说明 | 第13-15页 |
| 第一部分 文献综述 | 第15-48页 |
| 综述一 神经干细胞的研究方法进展 | 第15-35页 |
| 1 概述 | 第15-16页 |
| 1.1 神经干细胞的定义及主要生物学特性 | 第15页 |
| 1.2 神经干细胞与疾病 | 第15页 |
| 1.3 神经干细胞研究方法 | 第15-16页 |
| 2 在体实验动物模型 | 第16-19页 |
| 2.1 实验性脑出血(experimental intracerebral hemorrhage, EICH)模型 | 第16页 |
| 2.2 大脑中动脉闭塞(MCAO)模型 | 第16-17页 |
| 2.3 脑衰老模型 | 第17页 |
| 2.4 阿尔茨海默病(AD)模型 | 第17-18页 |
| 2.5 基因敲出(knockout)模型 | 第18-19页 |
| 2.6 转基因模型 | 第19页 |
| 人淀粉样前蛋白(amyloid precursor protein, APP)转基因小鼠老年痴呆模型 | 第19页 |
| 3 离体实验细胞模型 | 第19-22页 |
| 3.1 氧糖剥夺再灌注(OGD/R)模型 | 第19-20页 |
| 3.2 衰老模型 | 第20页 |
| 3.3 神经干细胞药物筛选模型 | 第20-22页 |
| 4 神经干细胞来源 | 第22-25页 |
| 5 试验方法 | 第25-29页 |
| 5.1 显微技术 | 第25-26页 |
| 5.2 细胞组分分析技术 | 第26-29页 |
| 6 研究展望 | 第29-31页 |
| 参考文献 | 第31-35页 |
| 综述二 中药对神经干细胞的作用及其机制研究进展 | 第35-48页 |
| 1 概述 | 第35页 |
| 2 中药对神经干细胞的影响 | 第35-39页 |
| 2.1 在体研究 | 第35-37页 |
| 2.2 离体研究 | 第37-39页 |
| 3 中药复方及中药单体通过Notch信号通路调控神经干细胞增殖分化的研究 | 第39-42页 |
| 3.1 中药复方与Notch信号通路 | 第40-41页 |
| 3.2 中药单体与Notch信号通路 | 第41-42页 |
| 4 问题与展望 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-48页 |
| 第二部分 实验研究 | 第48-75页 |
| 前言 | 第48-50页 |
| 实验一 胎鼠海马神经干细胞的分离培养与鉴定 | 第50-59页 |
| 1 材料 | 第51-52页 |
| 1.1 实验动物 | 第51页 |
| 1.2 药品及试剂 | 第51页 |
| 1.3 实验仪器 | 第51页 |
| 1.4 主要溶液制备 | 第51-52页 |
| 2 方法 | 第52-54页 |
| 2.1 胎鼠海马神经干细胞原代培养 | 第52-53页 |
| 2.2 神经干细胞传代培养 | 第53页 |
| 2.3 神经干细胞单克隆培养 | 第53页 |
| 2.4 神经干细胞分化培养 | 第53页 |
| 2.5 神经干细胞免疫荧光细胞染色鉴定 | 第53-54页 |
| 2.6 图像采集与形态学观察 | 第54页 |
| 3 结果 | 第54-56页 |
| 3.1 神经干细胞原代及传代培养的形态学观察 | 第55页 |
| 3.2 激光共聚焦显微镜镜下观察 | 第55-56页 |
| 4 讨论 | 第56-58页 |
| 5 结论 | 第58-59页 |
| 实验二 神经干细胞氧糖剥夺再灌注(OGD/R)模型的建立及MTS检测人参皂苷对NSCs-OGD/R的最佳作用浓度及时间点 | 第59-68页 |
| 1 材料 | 第60-61页 |
| 1.1 实验动物 | 第60页 |
| 1.2 药品及试剂 | 第60页 |
| 1.3 实验仪器 | 第60页 |
| 1.4 主要溶液制备 | 第60-61页 |
| 2 方法 | 第61-63页 |
| 2.1 神经干细胞原代培养及传代培养 | 第61页 |
| 2.2 实验分组及氧糖剥夺再灌注(OGD/R)模型的建立 | 第61页 |
| 2.3 MTS法检测人参皂苷对氧糖剥夺再灌注(OGD/R)神经干细胞增殖的最佳作用浓度 | 第61-62页 |
| 2.4 MTS法检测人参皂苷以最佳浓度(1μg/mL)作用于氧糖剥夺再灌注神经干细胞的最佳作用时间点 | 第62页 |
| 2.5 统计学处理 | 第62-63页 |
| 3 实验结果 | 第63-66页 |
| 3.1 人参皂苷对NSCs-OGD/R的增殖的最佳作用浓度 | 第63-64页 |
| 3.2 人参皂苷对NSCs-OGD/R的增殖的最佳作用时间点 | 第64-66页 |
| 4 讨论 | 第66-67页 |
| 5 结论 | 第67-68页 |
| 实验三 人参皂苷对NSCs-OGD/R增殖及分化的作用 | 第68-74页 |
| 1 材料 | 第69页 |
| 1.1 实验动物 | 第69页 |
| 1.2 药品及试剂 | 第69页 |
| 1.3 实验仪器 | 第69页 |
| 1.4 主要溶液的配制 | 第69页 |
| 2 实验方法 | 第69-71页 |
| 2.1 胎鼠海马神经干细胞分离培养及鉴定 | 第69页 |
| 2.2 实验分组 | 第69页 |
| 2.3 免疫荧光细胞染色法检测OGD/R神经干细胞的增殖和分化情况 | 第69-71页 |
| 3 图像采集与形态学观察 | 第71页 |
| 4 实验结果 | 第71-72页 |
| 5 讨论 | 第72-73页 |
| 6 结论 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-75页 |
| 全文总结 | 第75-76页 |
| 附录 | 第76-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
| 在学期间主要研究成果 | 第87-88页 |
| 个人简历 | 第88页 |
