| 摘要 | 第2-4页 |
| ABSTRACT | 第4-6页 |
| 引言 | 第9-13页 |
| 第一章 实验材料 | 第13-17页 |
| 1.1 主要药品与试剂 | 第13-15页 |
| 1.2 实验动物准备 | 第15页 |
| 1.3 细胞 | 第15页 |
| 1.4 仪器设备 | 第15-17页 |
| 第二章 实验方法 | 第17-27页 |
| 2.1 细胞培养 | 第17-18页 |
| 2.1.1 细胞复苏与培养 | 第17页 |
| 2.1.2 细胞传代 | 第17-18页 |
| 2.1.3 细胞收集 | 第18页 |
| 2.2 动物模型制作 | 第18页 |
| 2.3 实验分组与给药 | 第18页 |
| 2.3.1 分组 | 第18页 |
| 2.3.2 给药 | 第18页 |
| 2.4 药效学及毒性指标检测 | 第18-19页 |
| 2.5 肿瘤组织病理学检测 | 第19-20页 |
| 2.6 qRT-PCR检测相关基因表达 | 第20-23页 |
| 2.6.1 RNA抽提 | 第20页 |
| 2.6.2 RNA浓度与纯度检测 | 第20-21页 |
| 2.6.3 逆转录 | 第21页 |
| 2.6.4 qRT-PCR扩增 | 第21-23页 |
| 2.7 蛋白印迹(Western blot)检测相关蛋白的表达 | 第23-26页 |
| 2.7.1 总蛋白质提取 | 第23-24页 |
| 2.7.2 蛋白质浓度测定 | 第24页 |
| 2.7.3 变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第24-25页 |
| 2.7.4 转膜 | 第25-26页 |
| 2.7.5 抗原抗体反应 | 第26页 |
| 2.7.6 显影 | 第26页 |
| 2.8 统计学分析 | 第26-27页 |
| 第三章 实验结果 | 第27-43页 |
| 3.1 厄洛替尼不同剂量给药对肿瘤抑制的作用 | 第27页 |
| 3.2 厄洛替尼不同时辰给药对肿瘤生长的影响 | 第27-29页 |
| 3.3 厄洛替尼不同时辰给药组的毒性反应变化 | 第29-31页 |
| 3.4 厄洛替尼不同时辰给药后肿瘤组织病理学变化 | 第31-33页 |
| 3.5 厄洛替尼不同时辰给药对肿瘤组织中相关基因表达的影响 | 第33-41页 |
| 3.5.0 实时荧光定量PCR的标准曲线 | 第33页 |
| 3.5.1 肿瘤组织内EGFR mRNA在不同时辰点的表达 | 第33-35页 |
| 3.5.2 肿瘤组织内AKT1 mRNA在不同时辰点的表达 | 第35-37页 |
| 3.5.3 肿瘤组织内CDK-4 mRNA在不同时辰点的表达 | 第37-38页 |
| 3.5.4 肿瘤组织内CyclinDI mRNA在不同时辰点的表达 | 第38-41页 |
| 3.6 厄洛替尼不同时辰给药对肿瘤组织中相关蛋白表达的影响 | 第41-43页 |
| 3.6.1 肿瘤组织内蛋白AKT/P-AKT在不同时辰点的表达 | 第41-42页 |
| 3.6.2 肿瘤组织内蛋白CyclinD1在不同时辰点的表达 | 第42-43页 |
| 第四章 讨论 | 第43-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 综述 | 第53-67页 |
| 参考文献 | 第62-67页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第67-68页 |
| 附录 | 第68-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
