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MGFE肽预处理对骨修复中MSCs对流体剪切力和低氧损伤耐受的影响

摘要第3-5页
ABSTRACT第5-7页
英汉缩略词表第11-12页
1 绪论第12-21页
    1.1 问题的提出及国内外研究现状第12-19页
    1.2 实验目的、意义及主要实验内容第19-20页
        1.2.1 实验目的及意义第19页
        1.2.2 实验主要内容第19-20页
        1.2.3 实验技术路线第20页
    1.3 本实验创新点第20-21页
2 SD 大鼠原代 MSCS 的分离、培养及鉴定第21-33页
    2.1 引言第21页
    2.2 实验材料第21-24页
        2.2.1 实验动物第21页
        2.2.2 实验试剂第21-23页
        2.2.3 实验仪器第23页
        2.2.4 主要实验试剂的配制第23-24页
    2.3 实验方法第24-28页
        2.3.1 SD 大鼠原代 MSCs 的体外分离和接种第24-25页
        2.3.2 SD 大鼠 MSCs 的培养第25-26页
        2.3.3 SD 大鼠 MSCs 表面标志物的流式鉴定第26页
        2.3.4 SD 大鼠 MSCs 多向分化潜能鉴定第26-28页
    2.4 实验结果第28-31页
        2.4.1 SD 大鼠原代 MSCs 体外培养和细胞形态第28-30页
        2.4.2 SD 大鼠 MSCs 表面标志物的流式鉴定结果第30页
        2.4.3 SD 大鼠 MSCs 多向分化潜能鉴定结果第30-31页
    2.5 讨论与分析第31-32页
    2.6 本章小结第32-33页
3 MGF E 肽预处理对 MSCS 流体剪切力损伤耐受的影响第33-47页
    3.1 引言第33页
    3.2 实验材料第33-35页
        3.2.1 实验细胞第33页
        3.2.2 实验试剂第33页
        3.2.3 实验仪器第33-34页
        3.2.4 主要实验试剂的配制第34-35页
    3.3 实验过程与方法第35-37页
        3.3.1 流体剪切力刺激 MSCs第35-36页
        3.3.2 MTS 试剂盒检测细胞活性第36页
        3.3.3 EdU 染色检测细胞增殖能力第36页
        3.3.4 数据统计分析第36-37页
    3.4 实验内容和实验结果第37-43页
        3.4.1 平行平板流动腔装置第37页
        3.4.2 流体剪切力对 MSCs 活性的影响第37-38页
        3.4.3 MGF E 肽预处理对 MSCs 活性的影响第38-40页
        3.4.4 流体剪切力和 MGF E 肽预处理对 MSCs 增殖能力的影响第40-43页
    3.5 分析讨论第43-46页
    3.6 本章小结第46-47页
4 MGF E 肽预处理对 MSCS 低氧损伤耐受的影响第47-55页
    4.1 引言第47页
    4.2 实验试剂与仪器第47-48页
        4.2.1 实验试剂第47页
        4.2.2 实验仪器第47页
        4.2.3 主要实验试剂的配制第47-48页
    4.3 实验过程与方法第48页
        4.3.1 MGF E 肽预处理以及体外低氧(CoCl2)刺激 MSCs第48页
        4.3.2 MTS 试剂盒检测 MSCs 活性第48页
        4.3.3 EdU 染色检测细胞增殖第48页
        4.3.4 数据统计分析第48页
    4.4 实验内容与实验结果第48-54页
        4.4.1 不同浓度 CoCl2对细胞活性的影响第48-49页
        4.4.2 MGF E 肽预处理对 MSCs 活性的影响第49-51页
        4.4.3 CoCl2和 MGF E 肽预处理对 MSCs 增殖能力的影响第51-54页
    4.5 分析讨论第54页
    4.6 本章小结第54-55页
5 结论及后续工作展望第55-57页
    5.1 主要结论第55页
    5.2 后续工作建议第55-57页
致谢第57-58页
参考文献第58-64页
附录第64页
    A.作者在攻读硕士学位期间发表的论文目录第64页

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