| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 英汉缩略词表 | 第11-12页 |
| 1 绪论 | 第12-21页 |
| 1.1 问题的提出及国内外研究现状 | 第12-19页 |
| 1.2 实验目的、意义及主要实验内容 | 第19-20页 |
| 1.2.1 实验目的及意义 | 第19页 |
| 1.2.2 实验主要内容 | 第19-20页 |
| 1.2.3 实验技术路线 | 第20页 |
| 1.3 本实验创新点 | 第20-21页 |
| 2 SD 大鼠原代 MSCS 的分离、培养及鉴定 | 第21-33页 |
| 2.1 引言 | 第21页 |
| 2.2 实验材料 | 第21-24页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第21页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第21-23页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第23页 |
| 2.2.4 主要实验试剂的配制 | 第23-24页 |
| 2.3 实验方法 | 第24-28页 |
| 2.3.1 SD 大鼠原代 MSCs 的体外分离和接种 | 第24-25页 |
| 2.3.2 SD 大鼠 MSCs 的培养 | 第25-26页 |
| 2.3.3 SD 大鼠 MSCs 表面标志物的流式鉴定 | 第26页 |
| 2.3.4 SD 大鼠 MSCs 多向分化潜能鉴定 | 第26-28页 |
| 2.4 实验结果 | 第28-31页 |
| 2.4.1 SD 大鼠原代 MSCs 体外培养和细胞形态 | 第28-30页 |
| 2.4.2 SD 大鼠 MSCs 表面标志物的流式鉴定结果 | 第30页 |
| 2.4.3 SD 大鼠 MSCs 多向分化潜能鉴定结果 | 第30-31页 |
| 2.5 讨论与分析 | 第31-32页 |
| 2.6 本章小结 | 第32-33页 |
| 3 MGF E 肽预处理对 MSCS 流体剪切力损伤耐受的影响 | 第33-47页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 实验材料 | 第33-35页 |
| 3.2.1 实验细胞 | 第33页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第33页 |
| 3.2.3 实验仪器 | 第33-34页 |
| 3.2.4 主要实验试剂的配制 | 第34-35页 |
| 3.3 实验过程与方法 | 第35-37页 |
| 3.3.1 流体剪切力刺激 MSCs | 第35-36页 |
| 3.3.2 MTS 试剂盒检测细胞活性 | 第36页 |
| 3.3.3 EdU 染色检测细胞增殖能力 | 第36页 |
| 3.3.4 数据统计分析 | 第36-37页 |
| 3.4 实验内容和实验结果 | 第37-43页 |
| 3.4.1 平行平板流动腔装置 | 第37页 |
| 3.4.2 流体剪切力对 MSCs 活性的影响 | 第37-38页 |
| 3.4.3 MGF E 肽预处理对 MSCs 活性的影响 | 第38-40页 |
| 3.4.4 流体剪切力和 MGF E 肽预处理对 MSCs 增殖能力的影响 | 第40-43页 |
| 3.5 分析讨论 | 第43-46页 |
| 3.6 本章小结 | 第46-47页 |
| 4 MGF E 肽预处理对 MSCS 低氧损伤耐受的影响 | 第47-55页 |
| 4.1 引言 | 第47页 |
| 4.2 实验试剂与仪器 | 第47-48页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第47页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第47页 |
| 4.2.3 主要实验试剂的配制 | 第47-48页 |
| 4.3 实验过程与方法 | 第48页 |
| 4.3.1 MGF E 肽预处理以及体外低氧(CoCl2)刺激 MSCs | 第48页 |
| 4.3.2 MTS 试剂盒检测 MSCs 活性 | 第48页 |
| 4.3.3 EdU 染色检测细胞增殖 | 第48页 |
| 4.3.4 数据统计分析 | 第48页 |
| 4.4 实验内容与实验结果 | 第48-54页 |
| 4.4.1 不同浓度 CoCl2对细胞活性的影响 | 第48-49页 |
| 4.4.2 MGF E 肽预处理对 MSCs 活性的影响 | 第49-51页 |
| 4.4.3 CoCl2和 MGF E 肽预处理对 MSCs 增殖能力的影响 | 第51-54页 |
| 4.5 分析讨论 | 第54页 |
| 4.6 本章小结 | 第54-55页 |
| 5 结论及后续工作展望 | 第55-57页 |
| 5.1 主要结论 | 第55页 |
| 5.2 后续工作建议 | 第55-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-64页 |
| 附录 | 第64页 |
| A．作者在攻读硕士学位期间发表的论文目录 | 第64页 |
