| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-22页 |
| 1.1 魔芋概况 | 第10页 |
| 1.2 多酚氧化酶 | 第10-16页 |
| 1.2.1 多酚氧化酶的分布 | 第11页 |
| 1.2.2 多酚氧化酶的生理功能 | 第11-12页 |
| 1.2.3 多酚氧化酶的分子特征 | 第12-15页 |
| 1.2.4 多酚氧化酶的酶学特性 | 第15-16页 |
| 1.2.5 多酚氧化酶研究的发展趋势 | 第16页 |
| 1.3 果蔬酶促褐变的控制方法 | 第16-22页 |
| 1.3.1 果蔬的酶促褐变和褐变机理 | 第16-17页 |
| 1.3.2 PPO自杀性抑制理论 | 第17页 |
| 1.3.3 果蔬酶促褐变的控制方法 | 第17-20页 |
| 1.3.4 魔芋酶促褐变的控制途径 | 第20-22页 |
| 第二章 引言 | 第22-24页 |
| 2.1 研究背景 | 第22-23页 |
| 2.2 研究内容与技术路线 | 第23-24页 |
| 2.2.1 研究内容 | 第23页 |
| 2.2.2 技术路线 | 第23-24页 |
| 第三章 魔芋gDNA、不同组织RNA的提取与纯化方法的建立 | 第24-32页 |
| 3.1 材料与方法 | 第24页 |
| 3.2 魔芋基因组DNA提取与纯化方法的建立 | 第24-25页 |
| 3.3 魔芋不同组织RNA提取与纯化方法的建立 | 第25-28页 |
| 3.3.1 总RNA提取前的准备工作 | 第25页 |
| 3.3.2 提取魔芋总RNA的方法 | 第25-27页 |
| 3.3.3 电泳分析 | 第27-28页 |
| 3.3.4 总RNA量和纯度的测定 | 第28页 |
| 3.4 结果与分析 | 第28-30页 |
| 3.4.1 魔芋DNA提取结果 | 第28页 |
| 3.4.2 魔芋RNA提取结果 | 第28-30页 |
| 3.5 讨论 | 第30-32页 |
| 第四章 魔芋PPO基因的克隆 | 第32-54页 |
| 4.1 试验材料 | 第32-33页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第32页 |
| 4.1.2 主要仪器设备 | 第32页 |
| 4.1.3 工具酶和主要分子生物学试剂盒 | 第32页 |
| 4.1.4 培养基和其他试剂 | 第32-33页 |
| 4.2 试验方法 | 第33-40页 |
| 4.2.1 魔芋PPO基因保守区的克隆 | 第33-35页 |
| 4.2.2 魔芋PPO基因全长序列的获得 | 第35-40页 |
| 4.2.3 测序及序列分析 | 第40页 |
| 4.3 结果与分析 | 第40-51页 |
| 4.3.1 魔芋PPO基因保守区的克隆 | 第40-42页 |
| 4.3.2 魔芋PPO基因5'RACE及3'RACE克隆 | 第42-43页 |
| 4.3.3 魔芋PPO基因cDNA序列分析 | 第43-47页 |
| 4.3.4 魔芋PPO基因编码蛋白结构分析 | 第47-51页 |
| 4.4 讨论 | 第51-54页 |
| 第五章 结论 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 附录 | 第60-62页 |
| 致谢 | 第62-64页 |
| 学习期间发表的论文和参加的会议 | 第64页 |