摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第一章 绪论 | 第11-45页 |
1.1 引言 | 第11页 |
1.2 检测方法 | 第11-24页 |
1.2.1 聚合酶链式反应(PCR) | 第11-12页 |
1.2.2 诺瑟印迹杂交(Northern blotting) | 第12页 |
1.2.3 miRNA微阵列技术 | 第12-13页 |
1.2.4 电化学方法 | 第13-14页 |
1.2.5 比色法 | 第14页 |
1.2.6 电化学发光法 | 第14-15页 |
1.2.7 荧光法 | 第15-24页 |
1.3 放大方法 | 第24-36页 |
1.3.1 浓缩富集法 | 第25-26页 |
1.3.2 表面增强拉曼散射(SERS) | 第26-28页 |
1.3.3 超级三明治结构 | 第28-29页 |
1.3.4 滚环扩增反应(RCA) | 第29-31页 |
1.3.5 催化Hairpin探针自主装反应 | 第31-33页 |
1.3.6 酶辅助的信号放大方法 | 第33-34页 |
1.3.7 多种放大方法结合的联级反应 | 第34-36页 |
1.4 本论文的研究目的与内容 | 第36-38页 |
参考文献 | 第38-45页 |
第二章 构筑微米管-DNA-金纳米棒的三明治体系对miRNA-215的响应性检测 | 第45-67页 |
2.1 引言 | 第45-46页 |
2.2 实验部分 | 第46-49页 |
2.2.1 原料和试剂 | 第46-47页 |
2.2.2 组装氨基双炔微米管 | 第47页 |
2.2.3 合成probel修饰的PDA微米管 | 第47页 |
2.2.4 合成金纳米棒 | 第47-48页 |
2.2.5 制备probe2修饰的金纳米棒 | 第48页 |
2.2.6 在缓冲液、血清、组织提取液中检测目标miRNA-215 | 第48-49页 |
2.3 结果与讨论 | 第49-61页 |
2.3.1 构筑双键修饰的聚二乙炔微米管 | 第49-50页 |
2.3.2 构筑probe 1修饰的聚二乙炔微米管 | 第50-51页 |
2.3.3 构筑probe 2修饰的金纳米棒 | 第51页 |
2.3.4 基于聚二乙炔微米管三明治体系对miRNA-215的检测机理 | 第51-52页 |
2.3.5 金纳米棒的最佳浓度 | 第52-53页 |
2.3.6 浓缩富集过程 | 第53页 |
2.3.7 基于浓缩富集效应的三明治杂交反应动力学 | 第53-54页 |
2.3.8 与在200μL缓冲液中反应做对比 | 第54页 |
2.3.9 用浓缩富集的方法检测miRNA-215 | 第54-55页 |
2.3.10 微米管检测平台的重复性 | 第55-56页 |
2.3.11 与其他工作进行比较 | 第56页 |
2.3.12 微米管检测平台的专一性和选择性 | 第56-57页 |
2.3.13 微米管检测平台的可循环性 | 第57-59页 |
2.3.14 微米管检测平台的稳定性 | 第59页 |
2.3.15 在复杂环境中微米管检测平台的抗干扰能力 | 第59-60页 |
2.3.16 在临床样本中检测miRNA-215 | 第60-61页 |
2.4 本章小结 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-67页 |
第三章 构筑异相CHA/微米管波导体系对miRNA-21的灵敏性检测 | 第67-81页 |
3.1 引言 | 第67-68页 |
3.2 实验部分 | 第68-69页 |
3.2.1 原料和试剂 | 第68-69页 |
3.2.2 构筑微米管波导体系 | 第69页 |
3.2.3 MiRNA-21的检测实验 | 第69页 |
3.3 结果与讨论 | 第69-76页 |
3.3.1 Au@PDA微米管结合CHA放大反应的检测机理 | 第69-71页 |
3.3.2 异相CHA微米管体系与均相CHA体系作对比 | 第71-72页 |
3.3.3 Au@PDA微米管检测平台对miRNA-21的响应性检测 | 第72-74页 |
3.3.4 Au@PDA微米管检测平台的专一性和选择性 | 第74-75页 |
3.3.5 在血清环境中检测miRNA-21 | 第75页 |
3.3.6 在癌症病人的血清样本中检测miRNA-21 | 第75-76页 |
3.4 本章小结 | 第76-78页 |
参考文献 | 第78-81页 |
第四章 论文总结与展望 | 第81-83页 |
4.1 总结 | 第81页 |
4.2 展望 | 第81-83页 |
致谢 | 第83-85页 |
在读期间发表的学术论文及取得的研究成果 | 第85页 |