| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略词表 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-14页 |
| 实验材料与试剂 | 第14-18页 |
| 实验方法 | 第18-32页 |
| 一、肿瘤细胞培养 | 第18-19页 |
| 二、实验动物和肿瘤模型 | 第19-20页 |
| 三、HIFU 系统 | 第20-23页 |
| 四、DC 浸润肿瘤组织的免疫组化分析 | 第23-25页 |
| 五、骨髓衍生的DC 培养 | 第25-27页 |
| 六、用HIFU 处理过的肿瘤细胞体外刺激DC，检测其成熟状态 | 第27-28页 |
| 七、肿瘤生长情况监测 | 第28页 |
| 八、ELISPOT 技术测定特异性CTL 表达干扰素（IFN-γ）水平 | 第28-30页 |
| 九、使用流式细胞术检测肿瘤内部的DC 浸润情况 | 第30-32页 |
| 实验结果和讨论 | 第32-44页 |
| 一、HIFU 系统能够在实验肿瘤组织内产生典型的热效应 | 第32-33页 |
| 二、HIFU 处理后，大部分浸润的DC 被招募到热损伤的周围区域 | 第33-34页 |
| 三、在 HIFU 导致的热损伤的边缘区域的肿瘤细胞可能拥有较强的激活 DC的免疫刺激能力 | 第34-36页 |
| 四、HIFU 处理的肿瘤细胞刺激 DC 细胞成熟的作用与其诱导肿瘤细胞释放 HMGB1 和促进 HSP70/HSP90 膜转移有关 | 第36-38页 |
| 五、通过优化扫描策略来提高HIFU 诱导的抗肿瘤免疫能力是可行的 | 第38-41页 |
| 六、HIFU 的稀释扫描策略比密集扫描策略更有效地促进DC 向瘤内浸润并刺激其成熟 | 第41-44页 |
| 总结 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| 文献综述 | 第48-57页 |
| 在读期间发表论文和参加科研工作情况说明 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 附录：在读期间发表的论文 | 第59-75页 |
