中文摘要 | 第10-12页 |
Abstract | 第12-14页 |
1 引言 | 第15-26页 |
1.1 玫瑰概况 | 第15-16页 |
1.2 花卉品质改良研究进展 | 第16页 |
1.3 玫瑰花色研究进展 | 第16-17页 |
1.4 黄色花研究进展 | 第17-25页 |
1.4.1 使花瓣呈现黄色的色素种类 | 第17页 |
1.4.2 不同植物呈现黄色主要色素 | 第17-18页 |
1.4.3 植物色素合成途径及基因工程研究进展 | 第18-25页 |
1.4.3.1 类黄酮途径 | 第18-23页 |
1.4.3.2 类胡萝卜素途径 | 第23-25页 |
1.5 本研究的目的和意义 | 第25-26页 |
2 材料与方法 | 第26-40页 |
2.1 主要色素成分分析 | 第26-30页 |
2.1.1 植物材料 | 第26页 |
2.1.2 主要试剂 | 第26-27页 |
2.1.3 主要仪器 | 第27页 |
2.1.4 试验方法 | 第27-30页 |
2.1.4.1 花色测定 | 第27页 |
2.1.4.2 石油醚、盐酸、氨水反应 | 第27-28页 |
2.1.4.3 类黄酮的显色反应 | 第28页 |
2.1.4.4 紫外可见光分光光度法检测 | 第28-29页 |
2.1.4.5 HPLC检测 | 第29页 |
2.1.4.6 氯化铝比色法测总黄酮 | 第29-30页 |
2.2 玫瑰FLS基因及F3’H基因的克隆 | 第30-37页 |
2.2.1 植物材料 | 第30页 |
2.2.2 菌株和质粒 | 第30页 |
2.2.3 主要试剂 | 第30页 |
2.2.4 主要试剂配制 | 第30-31页 |
2.2.5 主要仪器 | 第31页 |
2.2.6 PCR引物 | 第31-32页 |
2.2.7 试验方法 | 第32-36页 |
2.2.7.1 总RNA提取 | 第32页 |
2.2.7.2 反转录合成cDNA第一链 | 第32-33页 |
2.2.7.3 RrFLS及RrF3’H基因中间片段克隆 | 第33-35页 |
2.2.7.4 RrFLS及RrF3’H基因3’片段克隆 | 第35-36页 |
2.2.8 RrFLS和RrF3’H生物信息学分析 | 第36-37页 |
2.3 类黄酮途径关键基因的表达分析 | 第37-40页 |
2.3.1 植物材料 | 第37-38页 |
2.3.2 主要试剂 | 第38页 |
2.3.3 主要仪器 | 第38页 |
2.3.4 试验方法 | 第38-40页 |
2.3.4.1 总RNA提取 | 第38页 |
2.3.4.2 反转录合成cDNA第一链 | 第38-39页 |
2.3.4.3 引物设计 | 第39页 |
2.3.4.4 实时荧光定量PCR | 第39-40页 |
3 结果与分析 | 第40-61页 |
3.1 花瓣色彩及色素构成 | 第40-46页 |
3.1.1 花瓣色彩 | 第40-41页 |
3.1.2 色素成分 | 第41-46页 |
3.1.2.1 主要色素成分 | 第41页 |
3.1.2.2 花瓣中类黄酮化合物种类 | 第41-43页 |
3.1.2.3 花瓣中主要色素合成途径 | 第43-44页 |
3.1.2.4 花瓣中花青苷及查尔酮含量 | 第44-45页 |
3.1.2.5 花瓣中总黄酮含量 | 第45-46页 |
3.2 玫瑰RrFLS基因及RrF3’H基因的克隆结果 | 第46-48页 |
3.2.1 提取总RNA的质量 | 第46-47页 |
3.2.2 中间片段克隆结果 | 第47页 |
3.2.3 基因3’RACE扩增结果 | 第47-48页 |
3.3 RrFLS基因及RrF3’H基因生物信息学分析 | 第48-59页 |
3.3.1 RrFLS基因生物信息学分析结果 | 第48-53页 |
3.3.2 RrF3’H基因生物信息学分析结果 | 第53-59页 |
3.4 类黄酮途径关键基因的表达分析 | 第59-61页 |
4 讨论 | 第61-64页 |
4.1 花瓣色素及合成途径差异 | 第61页 |
4.2 花色形成原因 | 第61-63页 |
4.3 RrFLS和RrF3’H基因序列分析 | 第63-64页 |
4.4 RrFLS基因和RrF3’H基因的生物信息学分析 | 第64页 |
5 结论 | 第64-66页 |
参考文献 | 第66-79页 |
致谢 | 第79-80页 |
攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第80页 |