| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 主要符号表 | 第21-23页 |
| 1 绪论 | 第23-54页 |
| 1.1 引言 | 第23-24页 |
| 1.2 有机小分子荧光染料 | 第24-37页 |
| 1.2.1 有机荧光染料发光构效关系 | 第24-26页 |
| 1.2.2 萘磺酸衍生物 | 第26页 |
| 1.2.3 Prodan衍生物 | 第26-27页 |
| 1.2.4 4-氨基邻苯二甲酰亚胺衍生物 | 第27-28页 |
| 1.2.5 NBD衍生物 | 第28页 |
| 1.2.6 噁嗪类染料 | 第28-29页 |
| 1.2.7 香豆素类染料 | 第29-30页 |
| 1.2.8 Bodipy类染料 | 第30-31页 |
| 1.2.9 荧光素类染料 | 第31-32页 |
| 1.2.10 罗丹明类染料 | 第32-33页 |
| 1.2.11 花菁类染料 | 第33-35页 |
| 1.2.12 其它有机荧光染料 | 第35-37页 |
| 1.3 萘酰亚胺类荧光染料 | 第37-40页 |
| 1.3.1 4-取代萘酰亚胺类染料 | 第37-39页 |
| 1.3.2 4-氨基萘酰亚胺类染料 | 第39页 |
| 1.3.3 4,5-二取代基萘酰亚胺类染料 | 第39-40页 |
| 1.4 蛋白质标记技术 | 第40-49页 |
| 1.4.1 荧光蛋白 | 第41-42页 |
| 1.4.2 SNAP-tag/CLIP-tag | 第42-43页 |
| 1.4.3 Halo-tag | 第43-44页 |
| 1.4.4 基于金属原子的多肽标签 | 第44-45页 |
| 1.4.5 非天然氨基酸 | 第45-46页 |
| 1.4.6 其它蛋白标签 | 第46-48页 |
| 1.4.7 蛋白-小分子相互作用 | 第48-49页 |
| 1.5 基于萘酰亚胺的蛋白质荧光探针 | 第49-50页 |
| 1.6 基于萘酰亚胺的比率型荧光探针 | 第50-52页 |
| 1.7 论文设计思想 | 第52-54页 |
| 2 基于氮丙啶的高亮度高稳定性萘酰亚胺类染料 | 第54-84页 |
| 2.1 引言 | 第54-55页 |
| 2.2 分子设计及合成路线 | 第55-57页 |
| 2.2.1 分子设计 | 第55-57页 |
| 2.2.2 分子合成路线 | 第57页 |
| 2.3 实验部分 | 第57-70页 |
| 2.3.1 仪器与原料 | 第57-58页 |
| 2.3.2 中间体及染料分子的合成 | 第58-69页 |
| 2.3.3 染料光谱测试方法 | 第69页 |
| 2.3.4 染料荧光寿命测试方法 | 第69页 |
| 2.3.5 染料荧光量子产率计算方法 | 第69页 |
| 2.3.6 染料荧光光稳定测试方法 | 第69-70页 |
| 2.3.7 理论计算方法 | 第70页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第70-83页 |
| 2.4.1 AN1-7在乙醇的基态构型的优化 | 第70-72页 |
| 2.4.2 AN1-3在不同媒介中优化构型 | 第72-73页 |
| 2.4.3 不同介质极性对AN1-3能级的影响 | 第73-75页 |
| 2.4.4 AN1 TICT态的分子构型及能级 | 第75-76页 |
| 2.4.5 AN1-3在乙醇中势能面的计算 | 第76-77页 |
| 2.4.6 AN1-7荧光性质测试 | 第77-79页 |
| 2.4.7 AN1-2与AN8-9的化学稳定性和光稳定性测试 | 第79-81页 |
| 2.4.8 氮丙啶取代的其它荧光染料 | 第81-83页 |
| 2.5 本章小结 | 第83-84页 |
| 3 基于萘酰亚胺的SNAP-tag免洗荧光探针 | 第84-114页 |
| 3.1 引言 | 第84-86页 |
| 3.2 分子设计及合成路线 | 第86-87页 |
| 3.2.1 分子设计 | 第86-87页 |
| 3.2.2 分子合成路线 | 第87页 |
| 3.3 实验部分 | 第87-95页 |
| 3.3.1 仪器与试剂 | 第87-88页 |
| 3.3.2 中间体及染料分子的合成 | 第88-94页 |
| 3.3.3 染料光谱测试方法 | 第94页 |
| 3.3.4 染料荧光寿命测试方法 | 第94页 |
| 3.3.5 染料荧光量子产率计算方法 | 第94页 |
| 3.3.6 BGAN-Amino与SNAP-surface-549体外竞争实验 | 第94页 |
| 3.3.7 荧光成像 | 第94-95页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第95-112页 |
| 3.4.1 快速响应SNAP-tag探针的荧光性质 | 第95-98页 |
| 3.4.2 BGAN-Amino与SNAP-tag反应活性及动力学测试 | 第98-99页 |
| 3.4.3 BGAN-Amino与SNAP-Surface-549竞争实验 | 第99页 |
| 3.4.4 基于BGAN-Amino的亚细胞器特异性标记 | 第99-101页 |
| 3.4.5 细胞内BGAN-Amino与商品化染料竞争实验 | 第101页 |
| 3.4.6 基于聚集诱导荧光淬灭的SNAP-tag探针筛选 | 第101-103页 |
| 3.4.7 SNAP-Aze聚集现象的表征 | 第103-109页 |
| 3.4.8 BGAN-Aze与SNAP-tag反应活性及动力学测试 | 第109-110页 |
| 3.4.9 BGAN-Aze标记的活细胞共聚焦成像 | 第110-111页 |
| 3.4.10 BGAN-Aze标记的细胞超分辨荧光成像 | 第111-112页 |
| 3.5 本章小结 | 第112-114页 |
| 4 基于新型ESPT的萘酰亚胺类比率型荧光探针 | 第114-163页 |
| 4.1 引言 | 第114-116页 |
| 4.2 分子设计及合成路线 | 第116-119页 |
| 4.2.1 分子设计 | 第116-117页 |
| 4.2.2 分子合成路线 | 第117-119页 |
| 4.3 实验部分 | 第119-134页 |
| 4.3.1 仪器与试剂 | 第119-120页 |
| 4.3.2 中间体及染料分子的合成 | 第120-134页 |
| 4.3.3 染料光谱测试方法 | 第134页 |
| 4.3.4 染料荧光寿命的测试 | 第134页 |
| 4.3.5 荧光成像 | 第134页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第134-161页 |
| 4.4.1 不同环境因素对ZTRS荧光比率变化的影响 | 第134-137页 |
| 4.4.2 Lyso-ZTRS对不同离子的荧光响应 | 第137-138页 |
| 4.4.3 Lyso-ZTRS对不同pH的荧光响应 | 第138-141页 |
| 4.4.4 不同溶剂对BuAN-AceN荧光光谱的影响 | 第141页 |
| 4.4.5 不同环境因素对BuAN-AceN荧光光谱的影响 | 第141-146页 |
| 4.4.6 BuAN-AceN荧光发光机理 | 第146-147页 |
| 4.4.7 分子内氢键的证明 | 第147-149页 |
| 4.4.8 BuAN-AceN荧光的归属 | 第149-151页 |
| 4.4.9 BuAN-AceN的瞬态光谱分析 | 第151-152页 |
| 4.4.10 靶向蛋白的比率型探针的应用 | 第152-158页 |
| 4.4.11 基于新型ESPT机理的荧光团拓展 | 第158-161页 |
| 4.5 本章小结 | 第161-163页 |
| 5 结论与展望 | 第163-165页 |
| 5.1 结论 | 第163-164页 |
| 5.2 创新点 | 第164页 |
| 5.3 展望 | 第164-165页 |
| 参考文献 | 第165-174页 |
| 附录A 部分化合物谱图 | 第174-189页 |
| 攻读博士学位期间发表学术论文情况 | 第189-190页 |
| 致谢 | 第190-191页 |
| 作者简介 | 第191页 |
