中文摘要 | 第8-10页 |
英文摘要 | 第10-12页 |
前言 | 第13-15页 |
材料和方法 | 第15-25页 |
1.材料 | 第15-20页 |
1.1 细胞 | 第15页 |
1.2 试剂及耗材 | 第15-16页 |
1.3 实验仪器 | 第16-17页 |
1.4 溶液、引物、siRNA | 第17-20页 |
2. 实验方法 | 第20-25页 |
2.1 细胞培养 | 第20页 |
2.2 细胞冻存 | 第20页 |
2.3 细胞复苏 | 第20页 |
2.4 全细胞蛋白提取 | 第20页 |
2.5 胞浆蛋白提取 | 第20-21页 |
2.6 胞核蛋白提取 | 第21页 |
2.7 细胞RNA提取 | 第21页 |
2.8 western blot检测细胞表达 | 第21页 |
2.9 RT-PCR反应扩增相应mRNA | 第21-22页 |
2.10 核酸凝胶电泳实验 | 第22页 |
2.11 MTS实验 | 第22页 |
2.12 划痕实验 | 第22页 |
2.13 侵袭实验 | 第22页 |
2.14 激光共聚焦实验 | 第22-23页 |
2.15 pulldown实验 | 第23页 |
2.16 CHIP实验 | 第23页 |
2.17 IP实验 | 第23页 |
2.18 组织芯片分析 | 第23页 |
2.19 免疫组织化学实验 | 第23-24页 |
2.20 动物体内成瘤实验 | 第24页 |
2.21 荧光报告基因启动子活性实验 | 第24页 |
2.22 肺癌细胞的质粒和siRNA转染 | 第24页 |
2.23 统计学方法 | 第24-25页 |
结果 | 第25-41页 |
1.肺癌细胞中,CPSF4正向调控COX-2 | 第25-26页 |
2.CPSF4影响肺癌细胞的形态和增殖 迁移侵袭能力 | 第26-30页 |
3.CPSF4通过激活NF-κ B通路增强COX-2 的表达 | 第30-33页 |
4.CPSF4直接结合COX-2 启动子加强COX-2 的表达 | 第33-35页 |
5.在临床患者中,CPSF4与COX-2 存在正相关性 | 第35-38页 |
6. CPSF4和COX-2 的过表达增加肿瘤体积的肿瘤质量 | 第38-41页 |
讨论 | 第41-44页 |
结论 | 第44-45页 |
参考文献 | 第45-51页 |
综述 | 第51-62页 |
综述参考文献 | 第56-62页 |
攻读学位期间发表论文情况 | 第62-63页 |
致谢 | 第63-65页 |