| 摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 引言 | 第8-9页 |
| 第一章 材料与方法 | 第9-16页 |
| 1.1 实验分组及排除标准 | 第9页 |
| 1.1.1 流式细胞术实验分组 | 第9页 |
| 1.1.2 免疫组化实验分组 | 第9页 |
| 1.1.3 排除标准 | 第9页 |
| 1.2 主要仪器和实验试剂 | 第9-11页 |
| 1.2.1 主要仪器与设备 | 第9-10页 |
| 1.2.2 主要试剂 | 第10-11页 |
| 1.3 实验方法 | 第11页 |
| 1.3.1 10×PBS缓冲液配制 | 第11页 |
| 1.3.2 PMA、离子霉素及BFA工作浓度的配制 | 第11页 |
| 1.3.3 Treg专用固定破膜剂及缓冲液配制 | 第11页 |
| 1.4 流式细胞术 | 第11-13页 |
| 1.4.1 PBMC的分离 | 第12页 |
| 1.4.2 PBMC铺板及活化 | 第12页 |
| 1.4.3 Th17细胞表面及胞内抗体标记 | 第12-13页 |
| 1.4.4 Treg细胞表面及胞内抗体标记 | 第13页 |
| 1.5 流式细胞仪分析检测 | 第13页 |
| 1.6 免疫组化实验 | 第13-14页 |
| 1.6.1 载玻片制备 | 第13页 |
| 1.6.2 切片及烤片 | 第13-14页 |
| 1.6.3 免疫组化染色步骤 | 第14页 |
| 1.7 免疫组化结果判断 | 第14-15页 |
| 1.8 ELISA检测血清中IL-17、IL-23和TGF-β的浓度 | 第15页 |
| 1.9 统计学分析 | 第15-16页 |
| 第二章 结果 | 第16-20页 |
| 2.1 EMs患者外周血中Th17和Treg细胞的频率 | 第16-17页 |
| 2.2 IL-17及Foxp3在异位内膜、在位内膜及正常内膜组织的表达 | 第17-18页 |
| 2.3 Th17和Treg细胞相关细胞因子的水平 | 第18-19页 |
| 2.4 Th17和Treg细胞在EMs的相关性 | 第19-20页 |
| 第三章 讨论 | 第20-24页 |
| 结论 | 第24-25页 |
| 参考文献 | 第25-27页 |
| 综述 | 第27-39页 |
| 参考文献 | 第35-39页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第39-40页 |
| 致谢 | 第40-41页 |
