| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-34页 |
| 1 常用DNA分子标记概述 | 第14-21页 |
| ·限制性内切酶片段长度多态性标记 | 第16-17页 |
| ·随机扩增多态DNA | 第17-18页 |
| ·扩增片段长度多态性 | 第18-19页 |
| ·简单序列重复 | 第19页 |
| ·线粒体DNA标记 | 第19-20页 |
| ·单链构像多态性 | 第20页 |
| ·单核苷酸多态 | 第20-21页 |
| 2 微卫星分子标记及其在鱼类遗传学中的应用 | 第21-34页 |
| ·微卫星分子标记的起源、分类及结构特点 | 第21-23页 |
| ·微卫星的多态性及其产生机制 | 第23-25页 |
| ·微卫星标记的优缺点 | 第25-27页 |
| ·微卫星标记的优点 | 第25-26页 |
| ·微卫星标记存在的问题 | 第26-27页 |
| ·微卫星标记的获得方法 | 第27-30页 |
| ·构建小插入片段基因组文库筛选微卫星DNA | 第27-28页 |
| ·通过含有重复序列的AFLP的快速分离法 | 第28-29页 |
| ·公共核酸序列数据库检索 | 第29-30页 |
| ·同源转移法 | 第30页 |
| ·微卫星分子标记在鱼类遗传学中的应用 | 第30-34页 |
| ·进行种群遗传多样性分析 | 第30-31页 |
| ·分析群体遗传结构 | 第31页 |
| ·个体识别和亲自鉴定 | 第31-32页 |
| ·遗传连锁图谱的构建和标记辅助育种 | 第32-34页 |
| 第二章 七种海水鱼部分基因组DNA微卫星富集文库的构建 | 第34-50页 |
| 1 引言 | 第34-37页 |
| 2 实验材料 | 第37-38页 |
| ·实验鱼 | 第37页 |
| ·实验仪器设备 | 第37页 |
| ·实验试剂 | 第37-38页 |
| 3 实验方法 | 第38-42页 |
| ·基因组DNA提取 | 第38-39页 |
| ·限制性内切酶酶切 | 第39页 |
| ·双链接头的制备 | 第39-40页 |
| ·双链接头与DNA酶切片段连接及检测 | 第40-41页 |
| ·含有微卫星DNA片段的富集 | 第41页 |
| ·目的片段的扩增和TA克隆 | 第41-42页 |
| ·微卫星DNA序列筛查 | 第42页 |
| 4 实验结果 | 第42-47页 |
| ·基因组DNA提取结果 | 第42-43页 |
| ·基因组DNA酶切结果 | 第43页 |
| ·双链接头连接后的PCR扩增结果 | 第43-44页 |
| ·磁珠杂交后目的洗脱片段的扩增结果 | 第44页 |
| ·微卫星阳性克隆的筛选结果 | 第44-45页 |
| ·测序结果与序列分析 | 第45-47页 |
| 5 讨论 | 第47-50页 |
| ·构建文库基因组DNA的质量 | 第47页 |
| ·限制性内切酶的选择 | 第47-48页 |
| ·生物素微卫星探针的选择 | 第48-49页 |
| ·TA克隆前PCR反应条件的优化 | 第49页 |
| ·小结 | 第49-50页 |
| 第三章 绿鳍马面触、皮氏叫姑鱼和梭鱼微卫星多态性检测 | 第50-64页 |
| 1 引言 | 第50-51页 |
| 2 实验材料 | 第51页 |
| ·实验鱼 | 第51页 |
| ·实验仪器及试剂 | 第51页 |
| 3 实验方法 | 第51-54页 |
| ·基因组DNA提取 | 第51页 |
| ·微卫星PCR引物获得 | 第51页 |
| ·多态微卫星引物的初筛 | 第51-52页 |
| ·PCR产物的聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第52-53页 |
| ·变性聚丙烯酰胺凝胶的制备方法 | 第52页 |
| ·电泳 | 第52页 |
| ·硝酸银染色 | 第52-53页 |
| ·三个群体的PCR扩增与多态位点确定 | 第53页 |
| ·统计与数据分析 #40· | 第53-54页 |
| 4 实验结果 | 第54-61页 |
| ·引物初筛结果 | 第54-55页 |
| ·三个群体的PCR扩增结果 | 第55-56页 |
| ·三个群体的遗传多样性分析 | 第56-61页 |
| ·绿鳍马面魨群体的遗传多样性分析结果 | 第56-58页 |
| ·皮氏叫姑鱼群体的遗传多样性分析结果 | 第58-60页 |
| ·梭鱼群体的遗传多样性分析结果 | 第60-61页 |
| 5 讨论 | 第61-64页 |
| ·实验方法分析 | 第61-62页 |
| ·种群遗传多样性分析 | 第62-63页 |
| ·小结 | 第63-64页 |
| 第四章 半滑舌鳎连锁图谱微卫星分离标记的获得 | 第64-74页 |
| 1 实验材料 | 第64页 |
| 2 实验方法 | 第64-65页 |
| ·作图策略 | 第64页 |
| ·微卫星标记的来源 | 第64页 |
| ·DNA提取、PCR反应和PAGE电泳检测 | 第64-65页 |
| ·分离标记数据统计 | 第65页 |
| 3 实验结果 | 第65-72页 |
| 4 讨论 | 第72-74页 |
| 第五章 半滑舌鳎人工诱导减数雌核发育后代的SSR分析 | 第74-80页 |
| 1 实验材料 | 第74页 |
| 2 实验方法 | 第74-75页 |
| ·基因组DNA提取 | 第74页 |
| ·PCR反应和PAGE电泳检测 | 第74页 |
| ·统计分析方法 | 第74-75页 |
| 3 实验结果 | 第75-78页 |
| 4 讨论 | 第78-80页 |
| 第六章 半滑舌鳎雌雄群体遗传差异分析的SSR初探 | 第80-87页 |
| 1 实验材料 | 第80页 |
| 2 实验方法 | 第80页 |
| ·微卫星标记的来源 | 第80页 |
| ·DNA提取、PCR反应和PAGE电泳检测 | 第80页 |
| ·数据统计 | 第80页 |
| 3 实验结果 | 第80-84页 |
| ·雌雄群体遗传差异分析 | 第80-83页 |
| ·性别特异微卫星标记筛选结果 | 第83-84页 |
| 4 讨论 | 第84-87页 |
| 结论 | 第87-88页 |
| 参考文献 | 第88-102页 |
| 致谢 | 第102-103页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第103-105页 |
