| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第9-10页 |
| 第1章 引言 | 第10-13页 |
| 1.1 新生儿缺氧缺血性脑损伤及其机制 | 第10-11页 |
| 1.2 海马 | 第11页 |
| 1.3 HCN通道 | 第11-13页 |
| 第2章 材料与方法 | 第13-24页 |
| 2.1 实验动物 | 第13页 |
| 2.2 主要实验设备及仪器 | 第13-14页 |
| 2.3 主要实验试剂 | 第14-16页 |
| 2.4 实验溶液配制 | 第16-17页 |
| 2.4.1 蔗糖解剖液 | 第16页 |
| 2.4.2 人工脑脊液 | 第16页 |
| 2.4.3 氧-糖剥夺液 | 第16-17页 |
| 2.4.4 电极内液 | 第17页 |
| 2.4.5 其它溶液 | 第17页 |
| 2.5 实验分组 | 第17-18页 |
| 2.6 电生理记录 | 第18-21页 |
| 2.6.1 脑片制备 | 第18-19页 |
| 2.6.2 电极制备 | 第19页 |
| 2.6.3 记录前准备 | 第19页 |
| 2.6.4 目标神经元全细胞膜片钳记录 | 第19-20页 |
| 2.6.5 海马CA1区椎体神经元体外缺氧缺血模型的制作 | 第20页 |
| 2.6.6 全细胞膜片钳记录 | 第20-21页 |
| 2.6.7 Ih激活动力学特性的记录 | 第21页 |
| 2.6.8 Ih反转电位的测定 | 第21页 |
| 2.6.9 电流钳记录自发放电 | 第21页 |
| 2.7 免疫组化染色 | 第21-23页 |
| 2.7.1 海马HCN通道的免疫组化染色 | 第21-22页 |
| 2.7.2 海马神经元To-pro-3 染色 | 第22-23页 |
| 2.8 统计学分析 | 第23-24页 |
| 第3章 结果 | 第24-37页 |
| 3.1 HCN通道在海马CA1区的分布 | 第24-25页 |
| 3.2 椎体神经元的Ih记录 | 第25-28页 |
| 3.3 椎体神经元受到缺氧缺血性损伤后的电生理变化 | 第28-35页 |
| 3.3.1 缺氧缺血后Ih的变化 | 第28-31页 |
| 3.3.2 缺氧缺血损伤对Ih的激活曲线和反转电位没有影响 | 第31-33页 |
| 3.3.3 缺氧缺血时椎体神经元自发放电减少 | 第33-35页 |
| 3.4 缺氧缺血后海马CA1区椎体神经元的死亡情况 | 第35-37页 |
| 第4章 讨论 | 第37-41页 |
| 4.1 HIE的治疗现状及研究意义 | 第37-38页 |
| 4.2 大鼠海马CA1区椎体神经元的Ih | 第38页 |
| 4.3 Ih在椎体神经元缺氧缺血时的保护作用 | 第38-40页 |
| 4.4 小结 | 第40-41页 |
| 第5章 结论与展望 | 第41-42页 |
| 5.1 结论 | 第41页 |
| 5.2 展望 | 第41-42页 |
| 致谢 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第47-48页 |
| 综述 | 第48-54页 |
| 参考文献 | 第52-54页 |
