| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-24页 |
| 1.1 生物小分子概述 | 第11-14页 |
| 1.2 检测生物小分子的传统方法 | 第14-18页 |
| 1.2.1 高效液相色谱法 | 第14页 |
| 1.2.2 电化学分析法 | 第14-15页 |
| 1.2.3 毛细管电泳法 | 第15页 |
| 1.2.4 表面增强拉曼散射光谱法 | 第15-16页 |
| 1.2.5 比色法 | 第16-17页 |
| 1.2.6 荧光分析法 | 第17-18页 |
| 1.3 荧光纳米材料在生物小分子检测中的应用 | 第18-22页 |
| 1.3.1 量子点 | 第18-19页 |
| 1.3.2 上转换荧光纳米颗粒 | 第19-20页 |
| 1.3.3 碳点 | 第20-21页 |
| 1.3.4 荧光金属纳米簇 | 第21-22页 |
| 1.4 本论文拟开展的工作 | 第22-24页 |
| 第二章 碳点-二氧化锰纳米复合物的制备及其在快速检测谷胱甘肽中的应用 | 第24-34页 |
| 2.1 引言 | 第24-25页 |
| 2.2 实验部分 | 第25-27页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第25-26页 |
| 2.2.2 荧光碳点的制备和纯化 | 第26页 |
| 2.2.3 碳点-二氧化锰复合物（C-dots-MnO_2）的制备和纯化 | 第26页 |
| 2.2.4 GSH的检测 | 第26-27页 |
| 2.2.5 特异性探究 | 第27页 |
| 2.2.6 血清样本中GSH含量的测定 | 第27页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第27-33页 |
| 2.3.1 碳点、二氧化锰纳米片层和C-dots-MnO_2纳米复合物的制备与表征 | 第27-29页 |
| 2.3.2 C-dots-MnO_2纳米复合物检测GSH的原理 | 第29-30页 |
| 2.3.4 实验条件的优化 | 第30-31页 |
| 2.3.5 GSH的检测 | 第31-32页 |
| 2.3.6 特异性考察 | 第32页 |
| 2.3.7 实际样本中GSH的检测 | 第32-33页 |
| 2.4 本章小结 | 第33-34页 |
| 第三章 基于以聚胸腺嘧啶为模版制备的荧光铜纳米颗粒免标检测巯基化合物 | 第34-43页 |
| 3.1 引言 | 第34-35页 |
| 3.2 实验部分 | 第35-36页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第35页 |
| 3.2.2 Cys、Hcy和GSH的荧光检测 | 第35-36页 |
| 3.2.3 人血清样本的处理和分析 | 第36页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第36-42页 |
| 3.3.1 生物巯基的检测原理 | 第36-37页 |
| 3.3.2 实验条件的优化 | 第37-39页 |
| 3.3.3 Cys、GSH和Hcy的荧光检测 | 第39-40页 |
| 3.3.4 选择性探究 | 第40-41页 |
| 3.3.5 生物样品中巯基化合物的检测 | 第41-42页 |
| 3.4 本章小结 | 第42-43页 |
| 第四章 基于以多功能ssDNA为模板制备的荧光铜纳米颗粒检测ATP | 第43-51页 |
| 4.1 引言 | 第43-44页 |
| 4.2 实验部分 | 第44-45页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第44页 |
| 4.2.2 ATP的荧光检测 | 第44-45页 |
| 4.2.3 琼脂糖凝胶电泳实验 | 第45页 |
| 4.2.4 细胞裂解液中ATP的检测 | 第45页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第45-50页 |
| 4.3.1 ATP检测原理 | 第45-46页 |
| 4.3.2 可行性探究 | 第46-47页 |
| 4.3.3 实验条件的优化 | 第47-48页 |
| 4.3.4 ATP的荧光检测 | 第48-49页 |
| 4.3.5 选择性探究 | 第49页 |
| 4.3.6 实际样本中ATP的检测 | 第49-50页 |
| 4.4 本章小结 | 第50-51页 |
| 结论 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 攻读硕士期间的代表性研究成果和个人简历 | 第63-64页 |
