| 本论文的创新点 | 第5-10页 |
| 中文摘要 | 第10-12页 |
| ABSTRACT | 第12-13页 |
| 本论文缩略词表 | 第14-16页 |
| 第一章 引言 | 第16-50页 |
| 1.1 拟南芥根的发育与调控 | 第16-22页 |
| 1.1.1 拟南芥根的结构 | 第16-18页 |
| 1.1.2 拟南芥根的发育过程 | 第18-19页 |
| 1.1.3 拟南芥根分生区的调控机制 | 第19-21页 |
| 1.1.4 拟南芥根尖静止中心的调控机制 | 第21-22页 |
| 1.2 葡萄糖在拟南芥生长发育中的作用研究 | 第22-30页 |
| 1.2.1 葡萄糖在植物代谢途径中的功能 | 第22-25页 |
| 1.2.2 葡萄糖信号的感知 | 第25-26页 |
| 1.2.3 植物中糖信号传导机制 | 第26-27页 |
| 1.2.4 葡萄糖与植物激素信号交叉 | 第27-30页 |
| 1.3 生长素信号通路 | 第30-41页 |
| 1.3.1 生长素的发现和生理作用 | 第30页 |
| 1.3.2 生长素合成与代谢 | 第30-33页 |
| 1.3.3 生长素运输 | 第33-37页 |
| 1.3.4 生长素信号途径 | 第37-39页 |
| 1.3.5 生长素调控主根发育 | 第39-41页 |
| 1.4 脱落酸信号通路 | 第41-48页 |
| 1.4.1 脱落酸的发现和生理作用 | 第41-42页 |
| 1.4.2 脱落酸的合成和分解 | 第42-44页 |
| 1.4.3 脱落酸信号通路 | 第44-46页 |
| 1.4.4 ABI5在ABA信号途径中功能和调控 | 第46-48页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第48-50页 |
| 第二章 材料与方法 | 第50-70页 |
| 2.1 实验材料 | 第50-55页 |
| 2.1.1 拟南芥株系 | 第50页 |
| 2.1.2 载体和菌种 | 第50-53页 |
| 2.1.3 相关试剂配制 | 第53-54页 |
| 2.1.4 本论文中使用的引物序列 | 第54-55页 |
| 2.2 实验方法 | 第55-70页 |
| 2.2.1 拟南芥的培养及外源处理 | 第55-56页 |
| 2.2.2 拟南芥根的显微观察及图像分析 | 第56页 |
| 2.2.3 拟南芥根相关形态学数据的测量与统计 | 第56-57页 |
| 2.2.4 拟南芥根尖GUS染色及定量 | 第57-58页 |
| 2.2.5 拟南芥根尖生长素含量的测定 | 第58页 |
| 2.2.6 植物基因组的提取方法 | 第58-59页 |
| 2.2.7 植物总RNA提取法以及mRNA的反转录 | 第59-60页 |
| 2.2.8 荧光实时定量PCR | 第60-61页 |
| 2.2.9 ABI5：：GUS质粒的构建 | 第61页 |
| 2.2.10 35S：ABI5-GR质粒的构建 | 第61-62页 |
| 2.2.11 高保真酶扩增目的片段及片段回收 | 第62-63页 |
| 2.2.12 载体制备 | 第63页 |
| 2.2.13 目的片段与载体连接 | 第63-64页 |
| 2.2.14 制备大肠杆菌DH5α超级感受态细胞 | 第64页 |
| 2.2.15 连接产物转化大肠杆菌DH5α超级感受态 | 第64-65页 |
| 2.2.16 菌落PCR鉴定及电泳检测 | 第65页 |
| 2.2.17 菌种保藏、测序及质粒提取 | 第65-66页 |
| 2.2.18 农杆菌感受态的制备 | 第66页 |
| 2.2.19 转化农杆菌 | 第66-67页 |
| 2.2.20 植物转化载体及拟南芥转化 | 第67页 |
| 2.2.21 拟南芥转化植株的筛选和转化植株纯合体的获得 | 第67-68页 |
| 2.2.22 相关株系的杂交 | 第68-69页 |
| 2.2.23 PCR结合限制性片度长度多态性分析 | 第69-70页 |
| 第三章 结果与分析 | 第70-95页 |
| 3.1 葡萄糖调控根分生区发育 | 第70-77页 |
| 3.1.1 高浓度葡萄糖抑制主根生长 | 第70页 |
| 3.1.2 高浓度葡萄糖处理下根分生区减短 | 第70-73页 |
| 3.1.3 葡萄糖作为信号分子调控分生区发育 | 第73-75页 |
| 3.1.4 葡萄糖不影响分生区细胞分裂活性 | 第75-76页 |
| 3.1.5 葡萄糖不影响根干细胞巢活性 | 第76-77页 |
| 3.2 高浓度葡萄糖抑制根分生区生长素活性 | 第77-80页 |
| 3.2.1 DII-VENUS指示根分生区生长素活性变化 | 第77-78页 |
| 3.2.2 高浓度葡萄糖抑制根尖生长素含量 | 第78-79页 |
| 3.2.3 葡萄糖通过调控生长素极性运输抑制根分生区 | 第79-80页 |
| 3.3 葡萄糖通过降低PIN1蛋白聚集抑制分生区 | 第80-83页 |
| 3.3.1 pin1突变体对葡萄糖敏感性降低 | 第80-81页 |
| 3.3.2 高浓度葡萄糖降低根尖PIN1蛋白积累 | 第81-82页 |
| 3.3.3 葡萄糖不影响根中PIN1转录水平 | 第82-83页 |
| 3.4 葡萄糖通过诱导ABI5抑制分生区 | 第83-90页 |
| 3.4.1 葡萄糖促进ABI5在根中的表达 | 第83-84页 |
| 3.4.2 ABI5：：GUS指示ABI5在根分生区分布变化 | 第84-86页 |
| 3.4.3 35S：：ABI5-GR株系的构建和表型观察 | 第86-89页 |
| 3.4.4 abi5-1突变体对葡萄糖敏感性降低 | 第89-90页 |
| 3.5 ABI5调控PIN1蛋白积累 | 第90-95页 |
| 3.5.1 葡萄糖对PIN1蛋白的抑制在abi5-1背景下被减弱 | 第90-92页 |
| 3.5.2 ABI5过表达降低PIN1蛋白积累 | 第92-95页 |
| 第四章 讨论 | 第95-101页 |
| 4.1 葡萄糖调控拟南芥根尖分生区发育 | 第95-96页 |
| 4.2 葡萄糖信号抑制根分生区中生长素活性 | 第96-97页 |
| 4.3 葡萄糖对PIN1蛋白的转录后调控 | 第97-98页 |
| 4.4 葡萄糖通过诱导ABI5降低分生区中PIN1蛋白积累 | 第98-100页 |
| 4.5 葡萄糖通过ABI5调控生长素抑制主根生长机理 | 第100-101页 |
| 参考文献 | 第101-114页 |
| 在读期间发表和投稿的论文 | 第114-115页 |
| 致谢 | 第115页 |
