| 中文摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-7页 |
| 引言 | 第10-12页 |
| 1 实验材料与方法 | 第12-19页 |
| 1.1 实验材料 | 第12-14页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第12页 |
| 1.1.2 饲养条件 | 第12页 |
| 1.1.3 实验场所 | 第12页 |
| 1.1.4 与实验相关的主要仪器和试剂 | 第12-13页 |
| 1.1.5 与实验相关的主要药品 | 第13-14页 |
| 1.2 实验方法 | 第14-18页 |
| 1.2.1 动物分组 | 第14-15页 |
| 1.2.2 实验动物造模 | 第15页 |
| 1.2.3 揉髌手法治疗 | 第15-16页 |
| 1.2.4 血清标本的采集及处理 | 第16页 |
| 1.2.5 血清样本ELISA法检测 | 第16-17页 |
| 1.2.6 软骨标本的采集和处理 | 第17-18页 |
| 1.3 统计学分析 | 第18-19页 |
| 1.4 实验动物及数据的纳入与排出 | 第19页 |
| 2 实验结果 | 第19-25页 |
| 2.1 兔膝关节软骨组织形态学的变化结果及统计分析结果 | 第19-22页 |
| 2.1.1 光镜下兔膝关节软骨组织病理学观察结果 | 第19-21页 |
| 2.1.2 膝OA组织病理学ManKin分级评分结果 | 第21-22页 |
| 2.2 兔血清IL-1β、IL-6、IL-13、IL-26、TNF-α含量检测分析结果 | 第22-25页 |
| 2.2.1 第1周末与第12周末血清IL-1β、IL-6、IL-13、IL-26、TNF-α统计学分析 | 第22-23页 |
| 2.2.2 第12周末血清IL-1β、IL-6、IL-13、IL-26、TNF-α单因素分析 | 第23-25页 |
| 3 讨论 | 第25-56页 |
| 3.1 动物模型与OA | 第25-30页 |
| 3.1.1 小动物模型：小鼠、大鼠、豚鼠和兔 | 第26-28页 |
| 3.1.2 大动物模型：狗、羊、马、猪 | 第28-30页 |
| 3.2 现代医学对膝OA的认识 | 第30-39页 |
| 3.2.1 膝关节的解剖 | 第30-31页 |
| 3.2.2 膝关节的生物力学 | 第31页 |
| 3.2.3 膝OA的病因病理 | 第31-33页 |
| 3.2.4 膝OA的治疗 | 第33-39页 |
| 3.3 中医对膝OA的认识 | 第39-48页 |
| 3.3.1 病因病机 | 第39-40页 |
| 3.3.2 治疗 | 第40-48页 |
| 3.4 细胞因子与膝OA | 第48-50页 |
| 3.5 揉髌手法与膝OA | 第50页 |
| 3.6 软骨病理学评分结果分析及评价 | 第50-51页 |
| 3.7 IL-1β、IL-6、IL-13、IL-26、TNF-α检测结果分析及评价 | 第51-56页 |
| 4 存在的问题与展望 | 第56-57页 |
| 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-84页 |
| 缩略词表 | 第84-86页 |
| 综述 扩大供肾来源的途径及临床研究热点 | 第86-96页 |
| 参考文献 | 第92-96页 |
| 致谢 | 第96-98页 |
| 个人简历及攻读学位期间获得的科研成果谢 | 第98-99页 |
