| 摘要 | 第2-4页 |
| abstract | 第4-5页 |
| 引言 | 第8-10页 |
| 材料与方法 | 第10-24页 |
| 1.1 材料 | 第10-12页 |
| 1.1.1 组织来源和临床资料获取 | 第10页 |
| 1.1.1.1 组织标本收集 | 第10页 |
| 1.1.1.2 病例纳入和排除标准 | 第10页 |
| 1.1.2 细胞株 | 第10页 |
| 1.1.3 主要实验试剂 | 第10-11页 |
| 1.1.4 主要实验仪器 | 第11-12页 |
| 1.1.5 常用溶液配置方法 | 第12页 |
| 1.2 方法 | 第12-24页 |
| 1.2.1 mi RNA荧光定量PCR(q RT-PCR) | 第12-19页 |
| 1.2.1.1 细胞培养基的配置 | 第12页 |
| 1.2.1.2 细胞培养 | 第12-14页 |
| 1.2.1.3 组织及细胞总RNA的提取 | 第14-16页 |
| 1.2.1.4 DNase消化 | 第16页 |
| 1.2.1.5 逆转录 | 第16-17页 |
| 1.2.1.6 Eva Green q RT-PCR反应体系 | 第17-19页 |
| 1.2.1.7 数据处理 | 第19页 |
| 1.2.2 细胞转染 | 第19-20页 |
| 1.2.2.1 验证转染后mi R-19b15p的表达水平 | 第20页 |
| 1.2.3 细胞增殖实验(CCK-8 assay) | 第20页 |
| 1.2.4 细胞侵袭实验(Transwell assay) | 第20页 |
| 1.2.5 细胞迁移实验(wound healing) | 第20-21页 |
| 1.2.6 细胞凋亡实验 | 第21页 |
| 1.2.7 靶基因预测 | 第21页 |
| 1.2.7.1 预测潜在的靶基因 | 第21页 |
| 1.2.7.2 探索mi R-19b15p与靶基因m RNA的相互关系 | 第21页 |
| 1.2.8 蛋白质印迹（Western blot） | 第21-23页 |
| 1.2.9 统计学处理 | 第23-24页 |
| 结果 | 第24-31页 |
| 2.1 mi R-19b15p在前列腺癌细胞及组织中低表达 | 第24-25页 |
| 2.2 CXCR6是mi R-19b15p的靶基因 | 第25-26页 |
| 2.3 mi R-19b15p对人前列腺癌细胞生物学行为的影响 | 第26-29页 |
| 2.4 前列腺癌组织mi R-19b15p同临床病理特征的关系 | 第29-31页 |
| 讨论 | 第31-33页 |
| 结论 | 第33-34页 |
| 本研究的不足之处 | 第34-35页 |
| 参考文献 | 第35-37页 |
| 综述 | 第37-46页 |
| 综述的参考文献 | 第43-46页 |
| 攻读硕士期间研究成果 | 第46-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
