| 缩略词表 | 第5-7页 |
| 英文摘要 | 第7-10页 |
| 中文摘要 | 第11-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-16页 |
| 第二章 LXRs激活通过抑制变性视网膜中Müller细胞和小胶质细胞活化而延缓变性进程 | 第16-39页 |
| 2.1 引言 | 第16页 |
| 2.2 T0901317激活Rd1及C57小鼠视网膜LXRs | 第16-22页 |
| 2.2.1 材料与方法 | 第16-20页 |
| 2.2.2 结果 | 第20-22页 |
| 2.3 LXRs激活对小鼠变性视网膜中Müller细胞胶质化和小胶质细胞活化的影响 | 第22-31页 |
| 2.3.1 材料与方法 | 第22-27页 |
| 2.3.2 实验结果 | 第27-31页 |
| 2.4 LXRs激活对小鼠变性视网膜中光感受细胞凋亡的影响 | 第31-34页 |
| 2.4.1 材料与方法 | 第31-33页 |
| 2.4.2 实验结果 | 第33-34页 |
| 2.5 LXRs激活对小鼠视网膜视功能的影响 | 第34-37页 |
| 2.5.1 材料与方法 | 第34-35页 |
| 2.5.2 实验结果 | 第35-37页 |
| 2.6 讨论 | 第37-38页 |
| 2.7 小结 | 第38-39页 |
| 第三章 LXRs激活抑制变性视网膜中胶质活化及免疫调控机制的研究 | 第39-50页 |
| 3.1 引言 | 第39页 |
| 3.2 LXRs激活后Rd1小鼠变性视网膜中炎症相关因子的变化 | 第39-41页 |
| 3.2.1 材料与方法 | 第39-40页 |
| 3.2.2 实验结果 | 第40-41页 |
| 3.3 LXRs激活后Rd1小鼠变性视网膜全基因表达谱的变化 | 第41-45页 |
| 3.3.1 材料和方法 | 第41-42页 |
| 3.3.2 实验结果 | 第42-45页 |
| 3.4 基因芯片结果以及JAK-STAT关键基因的的PCR验证。 | 第45-48页 |
| 3.4.1 材料与方法 | 第45-46页 |
| 3.4.2 实验结果 | 第46-48页 |
| 3.5 讨论 | 第48-49页 |
| 3.6 小结 | 第49-50页 |
| 第四章 LXRs激活对神经干细胞生物学特性及在Rd1小鼠视网膜中的影响 | 第50-63页 |
| 4.1 引言 | 第50页 |
| 4.2 T0901317激活对神经干细胞株L2.3 的增殖与凋亡的影响 | 第50-54页 |
| 4.2.1 材料与方法 | 第50-52页 |
| 4.2.2 实验结果 | 第52-54页 |
| 4.3 T0预处理联合植入Rd1小鼠玻璃体腔C17.2对视网膜的保护作用 | 第54-58页 |
| 4.3.1 材料与方法 | 第54-56页 |
| 4.3.2 实验结果 | 第56-58页 |
| 4.4 LXRs激活对移植入小鼠视网膜的C17.2 存活的影响 | 第58-60页 |
| 4.4.1 材料与方法 | 第58-59页 |
| 4.4.2 实验结果 | 第59-60页 |
| 4.5 联合T0与C17.2 移植对Rd1小鼠视功能的影响 | 第60-61页 |
| 4.5.1 材料与方法 | 第60页 |
| 4.5.2 实验结果 | 第60-61页 |
| 4.6 讨论 | 第61-62页 |
| 4.7 小结 | 第62-63页 |
| 全文总结 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-69页 |
| 文献综述 损伤视网膜中Müller细胞与小胶质细胞的胶质反应及机制研究进展 | 第69-83页 |
| 参考文献 | 第75-83页 |
| 在读期间发表论文 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84页 |
