| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-7页 |
| 中英文缩略词表 | 第10-12页 |
| 第1章 引言 | 第12-15页 |
| 第2章 ~(99)Tc~m-TP1623的制备及体外稳定性鉴定 | 第15-25页 |
| 2.1 实验材料 | 第15-18页 |
| 2.1.1 TP1623多肽 | 第15-16页 |
| 2.1.2 放射性核素 | 第16页 |
| 2.1.3 主要仪器与器材 | 第16-17页 |
| 2.1.4 主要试剂 | 第17页 |
| 2.1.5 主要溶液配制 | 第17-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-20页 |
| 2.2.1 小分子多肽的~(99)Tc~m标记、标记率与比活度的计算 | 第18-19页 |
| 2.2.2 ~(99)Tc~m的最大结合实验 | 第19-20页 |
| 2.2.3 ~(99)Tc~m-TP1623的体外和血清中稳定性测定 | 第20页 |
| 2.3 实验结果 | 第20-23页 |
| 2.3.1 各放射性组分在纸层析中的Rf值 | 第20页 |
| 2.3.2 ~(99)Tc~m-TP1623的标记率及比活度 | 第20-21页 |
| 2.3.3 ~(99)Tc~m的最大结合实验 | 第21-22页 |
| 2.3.4 ~(99)Tc~m的体外和血清中稳定性测定 | 第22-23页 |
| 2.4 讨论 | 第23-25页 |
| 第3章 ~(99)Tc~m-TP1623的体外细胞结合特性的研究 | 第25-31页 |
| 3.1 实验材料 | 第25-27页 |
| 3.1.1 细胞株 | 第25页 |
| 3.1.2 主要仪器与器材 | 第25-26页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第26页 |
| 3.1.4 主要试剂溶液配置 | 第26-27页 |
| 3.2 实验方法 | 第27-29页 |
| 3.2.1 乳腺癌细胞HER2表达水平的免疫组化分析 | 第27-28页 |
| 3.2.2 ~(99)Tc~m-TP1623的体外细胞结合活性的研究 | 第28-29页 |
| 3.3 实验结果 | 第29-30页 |
| 3.3.1 乳腺癌细胞的免疫组化结果 | 第29页 |
| 3.3.2 ~(99)Tc~m-TP1623的体外细胞结合活性结果 | 第29-30页 |
| 3.4 讨论 | 第30-31页 |
| 第4章 ~(99)Tc~m-TP1623在裸鼠体内显像及竞争抑制显像研究 | 第31-41页 |
| 4.1 实验材料 | 第31-33页 |
| 4.1.1 细胞株 | 第31页 |
| 4.1.2 实验动物 | 第31页 |
| 4.1.3 主要仪器与器材 | 第31-32页 |
| 4.1.4 主要试剂 | 第32-33页 |
| 4.1.5 主要试剂溶液配置 | 第33页 |
| 4.2 实验方法 | 第33-36页 |
| 4.2.1 荷瘤裸鼠模型的建立及鉴定 | 第33-34页 |
| 4.2.2 ~(99)Tc~m-TP1623的乳腺癌荷瘤裸鼠显像研究 | 第34-36页 |
| 4.3 实验结果 | 第36-39页 |
| 4.3.1 SKBR3及MDA-MB-231的荷瘤裸鼠肿瘤组织的HE染色及HER2表达的免疫组化 | 第36-37页 |
| 4.3.2 ~(99)Tc~m-TP1623的乳腺癌荷瘤裸鼠显像研究 | 第37-39页 |
| 4 讨论 | 第39-41页 |
| 第5章 全文结论与展望 | 第41-42页 |
| 5.1 全文结论 | 第41页 |
| 5.2 展望 | 第41-42页 |
| 致谢 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-45页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第45-46页 |
| 综述 | 第46-54页 |
| 参考文献 | 第53-54页 |
