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利用基因组编辑技术创造油菜脂肪酸变异新资源

摘要第7-9页
Abstract第9-10页
缩略词表第11-12页
1 前言第12-22页
    1.1 基因编辑技术的发展历程第12-15页
        1.1.1 锌指核酸酶(ZFNs)第13-14页
        1.1.2 转录因子效应物核酸酶(TALEN)第14-15页
        1.1.3 CRISPR/Cas9基因定点编辑技术第15页
    1.2 CRISPR/Cas系统的类型及作用原理第15-17页
        1.2.1 CRISPR/Cas系统的类型第15-16页
        1.2.2 CRISPR/Cas系统的原理第16-17页
    1.3 CRISPR/Cas9技术在作物遗传改良中的应用第17-18页
    1.4 油菜脂肪酸改良及脂肪酸相关基因的研究进展第18-21页
        1.4.1 FAD2基因的研究进展第19-20页
        1.4.2 FAD3基因的研究进展第20-21页
    1.5 本研究的目的与意义第21-22页
2 材料和方法第22-31页
    2.1 实验材料第22-23页
        2.1.1 植物材料第22页
        2.1.2 载体和菌株第22页
        2.1.3 主要试剂第22页
        2.1.4 培养基的配制第22-23页
    2.2 实验方法第23-31页
        2.2.1 FAD2和FAD3基因序列分析第23页
        2.2.2 CRISPR/Cas9载体构建及电击法转化农杆菌GV3101第23-24页
        2.2.3 农杆菌介导的油菜下胚轴遗传转化第24-26页
        2.2.4 转基因植株的阳性及编辑检测第26-27页
        2.2.5 突变单株TA克隆测序验证第27-28页
        2.2.6 突变单株背景回交及不同位点间的杂交聚合第28页
        2.2.7 近红外及GC测定突变体叶片及种子中脂肪酸含量第28-30页
        2.2.8 实验结果整理及数据分析第30-31页
3 结果分析第31-50页
    3.1 相关靶位点的设计及载体构建第31-35页
        3.1.1 FAD2基因与FAD3基因靶点的选择第31-34页
        3.1.2 CRISPR位点sgRNA的设计和克隆第34-35页
    3.2 油菜遗传转化及转基因阳性苗的鉴定筛选第35-37页
        3.2.1 油菜转基因植株的获得第35-36页
        3.2.2 油菜转基因植株阳性鉴定第36-37页
    3.3 转化当代及后代编辑检测第37-39页
    3.4 突变体的测序分析第39-42页
        3.4.1 FAD2基因突变体的测序分析第39-41页
        3.4.2 FAD3基因突变体的测序分析第41-42页
    3.5 不同靶点突变数量差异分析第42-43页
    3.6 突变单株基因型及回交后代转基因背景清除效率分析第43-46页
        3.6.1 突变单株及自交后代基因型分析第43-45页
        3.6.2 突变单株回交后代中转基因背景清除率的统计第45-46页
    3.7 突变体植株的表型分析第46-48页
        3.7.1 气相色谱仪和近红外测定脂肪酸含量差异比较第46页
        3.7.2 FAD2基因突变单株自交后代油酸含量差异性分析第46-47页
        3.7.3 FAD3基因突变单株T2代种子脂肪酸含量分析第47-48页
    3.8 位点特异标记开发第48-50页
        3.8.1 特异引物设计第48-49页
        3.8.2 位点特异引物PCR效果检测第49-50页
4 讨论第50-54页
    4.1 CRISPR/Cas9技术突变基因的稳定遗传及在油菜中的初步应用第50页
    4.2 本研究中FAD3基因突变效率低的可能原因第50-51页
    4.3 突变类型及靶位点的突变存在一定的偏好性第51-52页
    4.4 应用CRISPR/Cas9技术在油菜基因功能研究和新种质资源创造中的展望第52-54页
参考文献第54-62页
附录1:FAD2与FAD3基因序列比对及标记开发引物设计第62-67页
附录2:15%非变性PAGE胶试剂配制及检测程序第67-69页
附录3:FAD2基因T0代突变单株测序结果第69-73页
附录4:FAD2基因突变单株在T1、T2、T3种子中各种脂肪酸的相对含量第73-75页
致谢第75页

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