| 目录 | 第4-6页 |
| 摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 第一章 绪论 | 第12-16页 |
| 第二章 材料与方法 | 第16-32页 |
| 2.1 材料 | 第16-21页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第16页 |
| 2.1.2 细胞株 | 第16页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第16-18页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第18-19页 |
| 2.1.5 溶液配制 | 第19-21页 |
| 2.2 方法 | 第21-32页 |
| 2.2.1 LIG注射液的制备 | 第21页 |
| 2.2.2 模型制备、分组、取材 | 第21页 |
| 2.2.3 行为学检测 | 第21-22页 |
| 2.2.4 实时荧光定量PCR | 第22-25页 |
| 2.2.5 Western Blotting | 第25-27页 |
| 2.2.6 组织免疫荧光染色 | 第27-28页 |
| 2.2.7 BV2细胞的培养、传代、冻存、复苏和处理 | 第28-29页 |
| 2.2.8 星形胶质细胞体外培养和处理 | 第29-30页 |
| 2.2.9 小胶质细胞体外培养和处理 | 第30页 |
| 2.2.10 鞘内注射药物 | 第30-31页 |
| 2.2.11 统计方法 | 第31-32页 |
| 第三章 结果 | 第32-63页 |
| 3.1 LIG对正常小鼠和CFA诱导的慢性疼痛小鼠疼痛域值的影响 | 第32-35页 |
| 3.1.1 LIG不影响正常小鼠痛阈 | 第32-33页 |
| 3.1.2 LIG预处理减轻CFA诱导的小鼠机械痛敏和热痛敏行为 | 第33-34页 |
| 3.1.3 LIG后处理减轻CFA诱导的小鼠机械痛敏和热痛敏行为 | 第34-35页 |
| 3.2 LIG预处理对CFA诱导的小鼠脊髓中胶质细胞激活和炎症因子表达的影响 | 第35-42页 |
| 3.2.1 LIG预处理抑制脊髓小胶质细胞的激活 | 第35-38页 |
| 3.2.2 LIG预处理不能抑制脊髓星形胶质细胞的激活 | 第38-40页 |
| 3.2.3 LIG预处理抑制脊髓中多种炎症因子的表达 | 第40-42页 |
| 3.3 LIG对离体培养的小胶质细胞的作用 | 第42-51页 |
| 3.3.1 LPS刺激BV2细胞诱导炎症相关因子mRNA的表达 | 第42-43页 |
| 3.3.2 LIG抑制LPS诱导的BV2细胞中炎症相关因子的表达 | 第43-45页 |
| 3.3.3 LIG抑制LPS诱导的原代培养的小胶质细胞中炎症相关因子的表达 | 第45-46页 |
| 3.3.4 LIG不能抑制LPS诱导的BV2细胞中ERK/p38/JNK MAPK的激活 | 第46-48页 |
| 3.3.5 LIG抑制LPS诱导的BV2细胞中NF-κB的激活 | 第48-49页 |
| 3.3.6 NF-κB的抑制剂降低LPS诱导的BV2细胞中炎症相关因子的表达 | 第49-51页 |
| 3.4 LIG对离体培养的星形胶质细胞的作用 | 第51-58页 |
| 3.4.1 LPS刺激原代培养的星形胶质细胞诱导炎症相关因子mRNA的表达 | 第51-52页 |
| 3.4.2 LIG抑制LPS诱导的星形胶质细胞中炎症相关因子的表达 | 第52-54页 |
| 3.4.3 LIG不能抑制LPS诱导的星形胶质细胞中ERK/JNK MAPK的激活 | 第54-55页 |
| 3.4.4 LIG抑制LPS诱导的星形胶质细胞中NF-κB的激活 | 第55-56页 |
| 3.4.5 NF-κB的抑制剂降低LPS诱导的星形胶质细胞中炎症相关因子的表达 | 第56-58页 |
| 3.5 LIG通过小鼠脊髓星形胶质细胞中NF-KB通路参与CFA诱导的慢性炎症性疼痛的调节 | 第58-63页 |
| 3.5.1 足底注射CFA诱导小鼠脊髓中NF-κB的激活 | 第58页 |
| 3.5.2 鞘内注射NF-κB抑制剂缓解CFA诱导的小鼠痛敏行为 | 第58-60页 |
| 3.5.3 LIG预处理抑制CFA诱导的小鼠脊髓中NF-κB的激活 | 第60-61页 |
| 3.5.4 NF-κB表达于脊髓星形胶质细胞 | 第61-63页 |
| 第四章 讨论 | 第63-67页 |
| 第五章 结论 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-74页 |
| 英文缩写词表 | 第74-76页 |
| 综述 | 第76-88页 |
| 综述参考文献 | 第84-88页 |
| 在攻读硕士学位期间公开发表的论文与参加的项目 | 第88-89页 |
| 致谢 | 第89页 |
