摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
缩略词表 | 第9-13页 |
第1章 文献综述 | 第13-23页 |
1.1 化学性肝损伤 | 第13-15页 |
1.1.1 四氯化碳肝损伤模型 | 第13-14页 |
1.1.2 醋氨酚肝损伤模型 | 第14页 |
1.1.3 D-氨基半乳糖肝损伤模型 | 第14-15页 |
1.1.4 酒精性肝损伤模型 | 第15页 |
1.2 酒精性肝损伤的研究进展 | 第15-20页 |
1.2.1 酒精性肝损伤概述 | 第15-16页 |
1.2.2 酒精肝损伤的发生机制 | 第16页 |
1.2.3 酒精性肝损伤与酒精代谢相关酶ADH2、ALDH2及CYP2E1的关系 | 第16-18页 |
1.2.4 酒精性肝损伤的治疗 | 第18-20页 |
1.3 食用菌多糖及保健功能的研究 | 第20-21页 |
1.4 鸡枞菌营养价值及其保健功能的研究进展 | 第21-22页 |
1.5 研究的主要内容及意义 | 第22-23页 |
第2章 鸡枞菌多糖理化性质及其体外抗氧化作用的研究 | 第23-35页 |
2.1 材料与方法 | 第23-27页 |
2.1.1 材料与试剂 | 第23页 |
2.1.2 主要试剂的配制 | 第23-24页 |
2.1.3 仪器与设备 | 第24页 |
2.1.4 方法 | 第24-27页 |
2.1.5 数据处理 | 第27页 |
2.2 结果与分析 | 第27-33页 |
2.2.1 鸡枞菌多糖的得率 | 第27页 |
2.2.2 鸡枞菌多糖的生物活性成分分析 | 第27-28页 |
2.2.3 RPTA的DEAE-Cellulose52柱层析纯化结果 | 第28-29页 |
2.2.4 Sepharose 4B再纯化 | 第29页 |
2.2.5 RPTAⅠ-a纯度的鉴定 | 第29-30页 |
2.2.6 鸡枞菌纯化多糖的紫外光谱扫描 | 第30页 |
2.2.7 鸡枞菌纯化多糖的红外光谱扫描 | 第30-31页 |
2.2.8 体外抗氧化的测定结果 | 第31-33页 |
2.3 讨论 | 第33-34页 |
2.4 本章小结 | 第34-35页 |
第3章 鸡枞菌多糖对急性酒精肝损伤小鼠生化指标及其病理切片的影响 | 第35-47页 |
3.1 材料与方法 | 第35-40页 |
3.1.1 材料、试剂与仪器 | 第35-37页 |
3.1.2 实验方法 | 第37-40页 |
3.1.4 数据统计 | 第40页 |
3.2 结果与分析 | 第40-44页 |
3.2.1 RPTA对酒精所致急性肝损伤小鼠体重和肝脏指数的影响 | 第40-41页 |
3.2.2 RPTA对酒精所致急性肝损伤小鼠血清AST、ALT、TG水平的影响 | 第41页 |
3.2.3 RPTA对酒精所致急性肝损伤小鼠血液及肝脏MDA含量的影响 | 第41-42页 |
3.2.4 RPTA对酒精所致急性肝损伤小鼠血液及肝脏GSH含量的影响 | 第42页 |
3.2.5 RPTA对酒精所致急性肝损伤小鼠血液及肝脏GSH-Px和SOD活性的影响 | 第42-43页 |
3.2.6 RPTA对酒精所致急性肝损伤小鼠肝细胞病理切片的影响 | 第43-44页 |
3.3 讨论 | 第44-46页 |
3.4 本章小结 | 第46-47页 |
第4章 鸡枞菌多糖对急性肝损伤小鼠超微病理结构及相关基因mRNA表达的影响 | 第47-59页 |
4.1 材料、试剂与仪器 | 第47-48页 |
4.1.1 实验材料 | 第47页 |
4.1.2 实验动物 | 第47页 |
4.1.3 主要试剂 | 第47-48页 |
4.1.4 主要仪器 | 第48页 |
4.2 方法 | 第48-50页 |
4.2.1 酒精诱导肝损伤动物模型的建立 | 第48页 |
4.2.2 透射电镜样本的制备 | 第48页 |
4.2.3 荧光实时定量RT-PCR检测ADH2、ALDH2、CYP2E1 mRNA的表达 | 第48-50页 |
4.2.4 数据处理 | 第50页 |
4.3 结果与分析 | 第50-56页 |
4.3.1 鸡枞菌多糖对急性酒精肝损伤小鼠超微结构的影响 | 第50-53页 |
4.3.2 RPTA对急性酒精肝损伤小鼠肝脏ADH2、ALDH2及CYP2E1 mRNA表达的影响 | 第53-56页 |
4.4 讨论 | 第56-57页 |
4.5 本章小结 | 第57-59页 |
全文结论 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-73页 |
论文创新点 | 第73-74页 |
在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第74-75页 |
致谢 | 第75页 |