红曲霉N~+离子束紫外复合诱变及桔霉素研究
| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第9-19页 |
| 1.1 红曲霉简介 | 第9-13页 |
| 1.1.1 红曲霉的分类 | 第9-10页 |
| 1.1.2 红曲霉的理化特性 | 第10页 |
| 1.1.3 红曲霉的代谢产物 | 第10-13页 |
| 1.2 微生物诱变育种 | 第13-15页 |
| 1.2.1 离子束诱变育种 | 第13-14页 |
| 1.2.2 紫外诱变育种 | 第14-15页 |
| 1.2.3 复合诱变育种 | 第15页 |
| 1.3 红曲霉发酵工艺的研究 | 第15-17页 |
| 1.3.1 发酵工艺 | 第15-16页 |
| 1.3.2 培养基 | 第16-17页 |
| 1.3.3 发酵条件 | 第17页 |
| 1.4 本课题的研究意义、目的和内容 | 第17-19页 |
| 1.4.1 研究意义 | 第17-18页 |
| 1.4.2 研究目的 | 第18页 |
| 1.4.3 研究内容 | 第18-19页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第19-26页 |
| 2.1 材料 | 第19-20页 |
| 2.1.1 菌种 | 第19页 |
| 2.1.2 主要试剂和仪器 | 第19页 |
| 2.1.3 培养 | 第19-20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-26页 |
| 2.2.1 菌株的活化与保存 | 第20页 |
| 2.2.2 红曲霉N~+离子束诱变 | 第20-21页 |
| 2.2.3 高产洛伐他汀菌株筛选 | 第21页 |
| 2.2.4 诱变菌株的紫外复合诱变 | 第21页 |
| 2.2.5 高产洛伐他汀低产桔霉素菌株筛选 | 第21-22页 |
| 2.2.6 测定方法 | 第22-23页 |
| 2.2.7 桔霉素提取条件优化 | 第23-24页 |
| 2.2.8 液态发酵条件优化的单因素实验 | 第24-25页 |
| 2.2.9 正交优化实验 | 第25页 |
| 2.2.10 数据处理 | 第25-26页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第26-49页 |
| 3.1 标准曲线的制备 | 第26-27页 |
| 3.1.1 桔霉素标准曲线的制备 | 第26页 |
| 3.1.2 洛伐他汀标准曲线的制备 | 第26-27页 |
| 3.2 红曲霉N~+离子束诱变 | 第27-30页 |
| 3.3 红曲霉紫外诱变 | 第30-33页 |
| 3.3.1 诱变剂量的效应 | 第30-31页 |
| 3.3.2 诱变菌株筛选 | 第31-33页 |
| 3.3.3 M120-1的遗传稳定性 | 第33页 |
| 3.4 液态发酵培养条件的优化 | 第33-44页 |
| 3.4.1 单因素发酵实验 | 第33-43页 |
| 3.4.2 正交优化实验 | 第43-44页 |
| 3.5 桔霉素提取条件优化 | 第44-49页 |
| 3.5.1 水浴温度对桔霉素提取效果的影响 | 第44-45页 |
| 3.5.2 水浴时间对桔霉素提取效果的影响 | 第45-46页 |
| 3.5.3 超声时间对桔霉素提取效果的影响 | 第46-47页 |
| 3.5.4 料液比对桔霉素提取效果的影响 | 第47-48页 |
| 3.5.5 萃取剂种类对桔霉素提取效果的影响 | 第48-49页 |
| 第四章 讨论与结论 | 第49-54页 |
| 4.1 讨论 | 第49-53页 |
| 4.1.1 桔霉素检测条件的建立 | 第49-50页 |
| 4.1.2 洛伐他汀检测条件的建立 | 第50页 |
| 4.1.3 诱变效应 | 第50-51页 |
| 4.1.4 微生物筛选 | 第51页 |
| 4.1.5 液态发酵条件优化 | 第51-52页 |
| 4.1.6 桔霉素提取条件优化 | 第52-53页 |
| 4.2 结论 | 第53页 |
| 4.3 展望 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第59页 |
