摘要 I | 第6页 |
Abstract I | 第6-7页 |
摘要 II | 第7-8页 |
Abstract II | 第8-10页 |
缩略词表 | 第10-11页 |
PartⅠ 荠菜CBF途径抗冻基因的功能研究 | 第11-56页 |
第一章 植物CBF抗冻途径的研究进展 | 第11-17页 |
1.1 植物的寒冻损伤及其主要抗冻机制 | 第11-12页 |
1.2 植物CBF转录因子的研究概况 | 第12-13页 |
1.3 植物CBF抗冻途径其它功能基因及作用机制研究概况 | 第13-14页 |
1.4 荠菜及其CBF途径抗冻基因研究概况 | 第14-15页 |
1.5 荠菜CBF途径的基因调控研究 | 第15-16页 |
1.6 荠菜CBF抗冻途径基因在基因工程中的应用 | 第16-17页 |
第二章 CbCOR15bP冷诱导表达CbICE53的转基因烟草的获得和分析 | 第17-30页 |
2.1 引言 | 第17页 |
2.2 材料与试剂 | 第17-19页 |
2.2.1. 实验材料 | 第17页 |
2.2.2. 实验试剂 | 第17-19页 |
2.2.3. 设备和仪器 | 第19页 |
2.3 实验方法 | 第19-26页 |
2.3.1 荠菜冷诱导启动子CbCORl5bP的克隆 | 第19-22页 |
2.3.2 烟草转化载体的构建 | 第22-24页 |
2.3.3 CbCOR15bP::CbICE53重组载体农杆菌介导转化烟草 | 第24-25页 |
2.3.4 转基因烟草阳性苗的筛选与鉴定 | 第25-26页 |
2.4 实验结果 | 第26-30页 |
2.4.1 荠菜冷诱导启动子CbCOR15bP的克隆 | 第26页 |
2.4.2 烟草转化载体的构建 | 第26-28页 |
2.4.3 转基因烟草植株的获得与鉴定 | 第28-30页 |
第三章 CbCOR15bP::CbICE53与CbCBF共转化烟草的抗冻功能分析 | 第30-42页 |
3.1 引言 | 第30页 |
3.2 材料与试剂 | 第30-31页 |
3.2.1 实验材料 | 第30页 |
3.2.2 实验试剂 | 第30-31页 |
3.3 实验方法 | 第31-37页 |
3.3.1 荠菜CBF途径抗冻相关基因CbCBF的克隆 | 第31页 |
3.3.2 同尾酶法构建烟草转化载体 | 第31-34页 |
3.3.3 CbCOR15bP::CbICE53+pCamV35S::CbCBF重组质粒转化烟草 | 第34页 |
3.3.4 转基因烟草阳性苗的筛选 | 第34-36页 |
3.3.5 转基因烟草抗冻能力分析 | 第36-37页 |
3.4 实验结果 | 第37-42页 |
3.4.1 荠菜抗冻基因CbCBF的克隆及植物转化载体的构建 | 第37-38页 |
3.4.2 转基因烟草植株的获得与鉴定 | 第38-39页 |
3.4.3 转基因烟草的抗冻能力分析 | 第39-42页 |
第四章 CbCOR15bP::CbICE53与CbCBF、CbRCI35共转化烟草的抗冻功能分析 | 第42-50页 |
4.1 材料与试剂 | 第42页 |
4.1.1 实验材料 | 第42页 |
4.1.2 实验试剂 | 第42页 |
4.2 实验方法 | 第42-44页 |
4.2.1 荠菜CBF途径抗冻相关基因CbRCI35的克隆 | 第42页 |
4.2.2 同尾酶法构建烟草转化载体 | 第42-44页 |
4.2.3 重组质粒农杆菌介导转化烟草 | 第44页 |
4.2.4 转基因烟草阳性苗的筛选 | 第44页 |
4.2.5 转基因烟草抗冻能力分析 | 第44页 |
4.3 实验结果 | 第44-50页 |
4.3.1 荠菜抗冻基因CbRCI35的克隆和植物转化载体的构建 | 第44-46页 |
4.3.2 转基因烟草植株的获得与阳性苗的鉴定筛选 | 第46-48页 |
4.3.3 转基因烟草的抗冻能力分析 | 第48-50页 |
第五章 研究总结与展望 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-56页 |
PartⅡ 拟南芥MSH2/3基因在减数分裂重组过程中的功能研究 | 第56-88页 |
第一章 植物减数分裂重组过程的主要机制及研究进展 | 第56-62页 |
1.1 植物的减数分裂 | 第56-57页 |
1.2 植物减数分裂重组过程的机制 | 第57页 |
1.3 植物减数分裂重组过程的关键基因及其作用 | 第57-59页 |
1.4 植物MSH家族基因在减数分裂过程中作用的研究进展 | 第59-61页 |
1.5 拟南芥中以荧光四分体为基础的减数分裂重组研究体系 | 第61-62页 |
第二章 拟南芥MSH2基因在减数分裂重组过程中的功能研究 | 第62-71页 |
2.1 引言 | 第62页 |
2.2 材料与试剂 | 第62-63页 |
2.2.1 实验材料 | 第62页 |
2.2.2 实验试剂 | 第62-63页 |
2.2.3 仪器与设备 | 第63页 |
2.3 实验方法 | 第63-66页 |
2.3.1 拟南芥MSH2基因突变体的获得和鉴定 | 第63-64页 |
2.3.2 拟南芥Atmsh2纯合突变体的表型观察和分析 | 第64-65页 |
2.3.3 拟南芥MSH2基因及其突变体中同家族基因的表达谱分析 | 第65-66页 |
2.3.4 拟南芥Atmsh2与其它错配修复或减数分裂重组相关基因的多突变体的构建 | 第66页 |
2.4 实验结果 | 第66-71页 |
2.4.1 拟南芥MSH2基因突变体的获得和鉴定 | 第66-67页 |
2.4.2 拟南芥Atmsh2纯合突变体的表型观察和分析 | 第67-68页 |
2.4.3 拟南芥MSH2基因及其突变体中同家族基因的表达谱分析 | 第68-69页 |
2.4.4 拟南芥Atmsh2与其它错配修复或减数分裂重组相关基因的多突变体的构建 | 第69-71页 |
第三章 拟南芥MSH3基因在减数分裂重组过程中的功能研究 | 第71-82页 |
3.1 引言 | 第71页 |
3.2 材料与试剂 | 第71页 |
3.3 实验方法 | 第71-73页 |
3.3.1 拟南芥MSH3基因突变体的获得和鉴定 | 第71-72页 |
3.3.2 拟南芥Atmsh3纯合突变体的表型观察和分析 | 第72页 |
3.3.3 拟南芥Atmsh3突变体的基因表达谱分析 | 第72-73页 |
3.3.4 拟南芥Atmsh3与其它错配修复或减数分裂重组相关基因的多突变体的构建 | 第73页 |
3.3.5 拟南芥MSH3基因突变对减数分裂重组频率及育性的影响 | 第73页 |
3.4 实验结果 | 第73-82页 |
3.4.1 拟南芥MSH3基因突变体的获得和鉴定 | 第73-75页 |
3.4.2 拟南芥Atmsh3-1纯合突变体的表型观察和分析 | 第75-76页 |
3.4.3 拟南芥MSH3基因及其突变体中同家族基因的表达谱分析 | 第76-77页 |
3.4.4 拟南芥Atmsh3-1与其它错配修复或减数分裂重组相关基因的多突变体的构建 | 第77-78页 |
3.4.5 拟南芥MSH3基因突变对减数分裂重组频率及育性的影响 | 第78-82页 |
第四章 研究总结与展望 | 第82-83页 |
参考文献 | 第83-88页 |
硕士期间发表的文章及申请的专利 | 第88-89页 |
攻读硕士期间所获奖励 | 第89-90页 |
致谢 | 第90-91页 |