| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 符号说明 | 第10-11页 |
| 一、HSP70与HSP40研究进展(文献综述) | 第11-22页 |
| 1.1 热休克蛋白概述 | 第11-12页 |
| 1.1.1 热休克蛋白的命名 | 第11页 |
| 1.1.2 热休克蛋白的分类 | 第11-12页 |
| 1.2 HSP70研究进展 | 第12-16页 |
| 1.2.1 HSP70生物学特性 | 第12页 |
| 1.2.2 HSP70结构 | 第12-13页 |
| 1.2.3 HSP70作用机制 | 第13-15页 |
| 1.2.4 HSP70功能 | 第15-16页 |
| 1.3 HSP40研究进展 | 第16-20页 |
| 1.3.1 HSP40生物学特性 | 第17页 |
| 1.3.2 HSP40结构 | 第17-18页 |
| 1.3.3 HSP40作用机制 | 第18-19页 |
| 1.3.4 HSP40功能 | 第19-20页 |
| 1.4 HSP40和HSP70的相互作用与调节 | 第20-22页 |
| 1.4.1 HSP40调节HSP70功能的一般机制 | 第20页 |
| 1.4.2 HSP40调节HSP70 ATP酶活性 | 第20-21页 |
| 1.4.3 HSP40依赖的HSP70折叠非自然状态蛋白的传递 | 第21-22页 |
| 二、大肠杆菌热休克蛋白DnaK和DnaJ对细胞周期的影响 | 第22-85页 |
| 2.1 引言 | 第22-26页 |
| 2.1.1 大肠杆菌热休克蛋白DnaK和DnaJ | 第22页 |
| 2.1.2 核糖体的休眠 | 第22-25页 |
| 2.1.3 研究目的与意义 | 第25-26页 |
| 2.2 实验材料 | 第26-33页 |
| 2.2.1 菌种与质粒 | 第26页 |
| 2.2.2 引物 | 第26-28页 |
| 2.2.3 主要培养基的配制 | 第28-30页 |
| 2.2.4 实验试剂 | 第30-33页 |
| 2.3 实验方法 | 第33-49页 |
| 2.3.1 质粒构建 | 第33-37页 |
| 2.3.2 感受态细胞制备及转化 | 第37-38页 |
| 2.3.3 细胞周期参数测定 | 第38-40页 |
| 2.3.4 细胞中的总蛋白量和DnaA含量的测定 | 第40-43页 |
| 2.3.5 细菌双杂交 | 第43-44页 |
| 2.3.6 卡那抗性基因的消除 | 第44页 |
| 2.3.7 P1转导构建双突变体 | 第44-46页 |
| 2.3.8 点突变 | 第46-49页 |
| 2.4 实验结果 | 第49-82页 |
| 2.4.1 DnaK蛋白加快细胞周期进程 | 第49-55页 |
| 2.4.2 DnaJ蛋白减慢细胞周期进程 | 第55-61页 |
| 2.4.3 DnaK可能通过影响单细胞DnaA的量来调控复制 | 第61-63页 |
| 2.4.4 DnaJ不影响细胞DnaA的量 | 第63-65页 |
| 2.4.5 DnaK、DnaJ和YfiA蛋白之间有相互作用 | 第65-66页 |
| 2.4.6 △yfiA△dnaK和△yfiA△dnaJ双突变体影响细胞形态和细胞周期 | 第66-72页 |
| 2.4.7 同时缺失dnaK和dnaJ基因使细胞死亡 | 第72-73页 |
| 2.4.8 DnaK和DnaJ蛋白氨基酸突变分析 | 第73-75页 |
| 2.4.9 DnaK或DnaJ蛋白与YfiA相互作用域的确定 | 第75-77页 |
| 2.4.10 DnaK或DnaJ与YfiA蛋白的相互作用影响复制起始 | 第77-82页 |
| 2.5 讨论 | 第82-85页 |
| 2.5.1 DnaK和DnaJ以不同方式影响细胞周期 | 第82页 |
| 2.5.2 DnaK和DnaJ与YfiA蛋白的相互作用影响DNA复制起始 | 第82-84页 |
| 2.5.3 同时缺失DnaK和YfiA或DnaJ和YfiA影响细胞骨架并导致细胞出芽 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-93页 |
| 致谢 | 第93页 |
