中英文缩写对照词表 | 第7-9页 |
摘要 | 第9-11页 |
Abstract | 第11-12页 |
第一章 序言 | 第13-26页 |
1.1 肥胖症 | 第13-17页 |
1.1.1 身体质量指数与疾病 | 第13-14页 |
1.1.2 超重和肥胖的分布 | 第14-17页 |
1.2 预防和治疗超重和肥胖产品 | 第17-20页 |
1.2.1 已上市减肥药物现状 | 第17-19页 |
1.2.2 正在研发的药物 | 第19-20页 |
1.3 壳寡糖和壳聚糖的研究现状 | 第20-25页 |
1.3.1 壳寡糖 | 第20-22页 |
1.3.2 壳聚糖 | 第22页 |
1.3.3 壳寡糖和壳聚糖的相关减肥产品 | 第22-25页 |
1.4 本课题提出 | 第25-26页 |
第二章 COSC和CTSC的制备 | 第26-46页 |
2.1 前言 | 第26-28页 |
2.1.1 剂型的选择 | 第27页 |
2.1.2 COSC含量测定方法的选择 | 第27页 |
2.1.3 CTSC含量测定方法的选择 | 第27-28页 |
2.2 实验材料 | 第28-29页 |
2.2.1 实验仪器与试剂 | 第28-29页 |
2.2.2 实验原料 | 第29页 |
2.3 实验方法 | 第29-34页 |
2.3.1 苯酚-硫酸测定方法 | 第29-30页 |
2.3.2 活性红4离子缔合测定方法 | 第30-31页 |
2.3.3 胶囊制备工艺研究 | 第31-32页 |
2.3.4 胶囊剂的质量检查 | 第32-34页 |
2.4 实验结果 | 第34-44页 |
2.4.1 苯酚-硫酸测定方法 | 第34-35页 |
2.4.2 活性红4离子缔合测定方法 | 第35-37页 |
2.4.3 COSC制备工艺研究 | 第37-38页 |
2.4.4 COSC质量检查 | 第38-41页 |
2.4.5 CTSC制备工艺研究 | 第41页 |
2.4.6 CTSC质量检查 | 第41-44页 |
2.5 实验结论与讨论 | 第44-46页 |
第三章 COSC和CTSC减肥功能评价 | 第46-66页 |
3.1 前言 | 第46页 |
3.2 实验材料 | 第46-47页 |
3.2.1 实验仪器与试剂 | 第46-47页 |
3.2.2 实验原料与动物 | 第47页 |
3.3 实验方法 | 第47-49页 |
3.3.1 动物造模 | 第47-48页 |
3.3.2 动物分组 | 第48页 |
3.3.3 给药剂量与方法 | 第48页 |
3.3.4 肥胖指标测定 | 第48-49页 |
3.3.5 血液生化指标测定 | 第49页 |
3.3.6 组织切片观察 | 第49页 |
3.3.7 数据统计分析 | 第49页 |
3.4 实验结果 | 第49-64页 |
3.4.1 大鼠进食量的变化 | 第49-51页 |
3.4.2 大鼠每周体重变化 | 第51-52页 |
3.4.3 对大鼠体重增重的影响 | 第52-54页 |
3.4.4 大鼠脂肪垫与脂/体比的变化 | 第54-56页 |
3.4.5 大鼠血脂的变化 | 第56-58页 |
3.4.6 大鼠脏器指数的变化 | 第58-60页 |
3.4.7 肝脏形态及切片观察 | 第60-61页 |
3.4.8 心脏切片观察 | 第61-62页 |
3.4.9 肾脏切片观察 | 第62页 |
3.4.10 脂肪组织切片观察 | 第62-64页 |
3.5 实验结论与讨论 | 第64-66页 |
第四章 COST对肥胖大鼠脂肪组织LXRα 和PPARγ mRNA表达影响机制研究 | 第66-76页 |
4.1 前言 | 第66-67页 |
4.2 实验材料 | 第67-68页 |
4.2.1 实验仪器和试剂 | 第67-68页 |
4.2.2 实验样本 | 第68页 |
4.3 实验方法 | 第68-70页 |
4.3.1 引物设计 | 第68-69页 |
4.3.2 大鼠脂肪组织总RNA提取 | 第69页 |
4.3.3 逆转录反应-cDNA的合成 | 第69-70页 |
4.3.4 荧光定量聚合酶链式反应(FQRT-PCR) | 第70页 |
4.4 实验结果 | 第70-74页 |
4.4.1 差异基因表达及GO功能富集分析 | 第70-71页 |
4.4.2 pathway功能富集显著性分析 | 第71-72页 |
4.4.3 PPAR信号通路 | 第72-73页 |
4.4.4 FQRT-PCR结果 | 第73-74页 |
4.5 实验结论与讨论 | 第74-76页 |
全文总结及研究展望 | 第76-78页 |
参考文献 | 第78-89页 |
攻读学位期间完成的论文 | 第89-90页 |
致谢 | 第90页 |