| 中文摘要 | 第9-21页 |
| 英文摘要 | 第21-34页 |
| 常用缩写词中英文对照表 | 第35-36页 |
| 前言 | 第36-44页 |
| 参考文献（前言） | 第39-44页 |
| 第一部分 内质网应激相关性凋亡在链脲佐菌素诱导糖尿病大鼠模型逼尿肌病变进展中的作用机制研究 | 第44-99页 |
| 第一节 糖尿病模型大鼠随病程进展逼尿肌功能学演变观察评估 | 第45-61页 |
| 1 材料与方法 | 第46-52页 |
| 1.1 实验动物 | 第46页 |
| 1.2 主要试剂与仪器 | 第46-48页 |
| 1.3 糖尿病大鼠模型的制备与鉴定 | 第48-49页 |
| 1.4 在体尿动力学测试 | 第49-50页 |
| 1.5 离体逼尿肌肌条机械性牵张刺激实验 | 第50-51页 |
| 1.6 统计学分析 | 第51-52页 |
| 2 结果 | 第52-57页 |
| 2.1 糖尿病模型大鼠成模概况 | 第52页 |
| 2.2 各组大鼠血糖、体重、膀胱湿重及膀胱湿重/体重平均比值的对比 | 第52-53页 |
| 2.3 各组大鼠尿动力学检测指标比较 | 第53-55页 |
| 2.4 离体逼尿肌肌条机械性牵张刺激实验 | 第55-57页 |
| 3 讨论 | 第57-60页 |
| 4 结论 | 第60-61页 |
| 第二节 糖尿病模型大鼠随病程进展逼尿肌组织形态学演变观察评估 | 第61-75页 |
| 1 材料与方法 | 第62-66页 |
| 1.1 实验试剂 | 第62页 |
| 1.2 实验仪器 | 第62-63页 |
| 1.3 主要溶液配制 | 第63页 |
| 1.4 组织石蜡包埋及切片制备 | 第63-64页 |
| 1.5 组织切片HE染色 | 第64页 |
| 1.6 组织切片VG染色 | 第64页 |
| 1.7 光镜组织观察、图像采集及逼尿肌胶原纤维面积所占百分比测定 | 第64页 |
| 1.8 电镜观察前组织准备 | 第64-65页 |
| 1.9 电镜组织观察及图像采集 | 第65页 |
| 1.10 统计学分析 | 第65-66页 |
| 2 结果 | 第66-72页 |
| 2.1 光镜下逼尿肌组织形态及演变 | 第66-70页 |
| 2.2 电镜下逼尿肌细胞超微结构形态及演变 | 第70-72页 |
| 3 讨论 | 第72-74页 |
| 4 结论 | 第74-75页 |
| 第三节 糖尿病模型大鼠随病程进展逼尿肌细胞增殖及凋亡水平演变的研究 | 第75-85页 |
| 1 材料与方法 | 第76-79页 |
| 1.1 实验试剂 | 第76页 |
| 1.2 实验仪器 | 第76页 |
| 1.3 主要溶液配制 | 第76-77页 |
| 1.4 组织切片SABC免疫组化染色法检测PCNA表达 | 第77页 |
| 1.5 组织切片 TUNEL 染色 | 第77-78页 |
| 1.6 PCNA免疫组化阳性表达率及凋亡指数的计算 | 第78页 |
| 1.7 统计学分析 | 第78-79页 |
| 2 结果 | 第79-82页 |
| 2.1 糖尿病模型大鼠逼尿肌细胞增殖水平及随病程演变情况 | 第79-80页 |
| 2.2 糖尿病模型大鼠逼尿肌细胞凋亡水平及随病程演变情况 | 第80-82页 |
| 3 讨论 | 第82-84页 |
| 4 结论 | 第84-85页 |
| 第四节 糖尿病大鼠随病程进展逼尿肌细胞ERS相关性凋亡标志物的表达演变 | 第85-99页 |
| 1 材料与方法 | 第86-93页 |
| 1.1 实验试剂 | 第86页 |
| 1.2 实验仪器 | 第86-87页 |
| 1.3 主要溶液配制 | 第87-88页 |
| 1.4 三种ERS相关性凋亡标志物蛋白Western blotting检测 | 第88-90页 |
| 1.5 逼尿肌组织总RNA提取及q RT-PCR检测 | 第90-92页 |
| 1.6 统计学分析 | 第92-93页 |
| 2 结果 | 第93-96页 |
| 2.1 三种ERS相关性凋亡标志物蛋白的表达及演变 | 第93页 |
| 2.2 三种ERS相关性凋亡标志物m RNA的表达及演变 | 第93-94页 |
| 2.3 ERS相关性凋亡标志物表达与DSMCs增殖及凋亡水平演变的相关性分析 | 第94-96页 |
| 3 讨论 | 第96-98页 |
| 4 结论 | 第98-99页 |
| 第二部分 内质网应激对体外高糖环境下大鼠DSMCs凋亡的影响研究 | 第99-137页 |
| 第一节 大鼠DSMCs的分离、原代培养、传代及鉴定 | 第100-109页 |
| 1 材料与方法 | 第101-104页 |
| 1.1 细胞来源 | 第101页 |
| 1.2 实验试剂 | 第101页 |
| 1.3 实验仪器 | 第101-102页 |
| 1.4 大鼠DSMCs的分离 | 第102-103页 |
| 1.5 大鼠DSMCs的原代培养和传代 | 第103页 |
| 1.6 大鼠DSMCs的鉴定 | 第103-104页 |
| 2 结果 | 第104-106页 |
| 2.1 大鼠DSMCs的分离、原代培养及传代 | 第104页 |
| 2.2 激光共聚焦显微镜下观察免疫荧光鉴定大鼠DSMCs | 第104-106页 |
| 3 讨论 | 第106-108页 |
| 4 结论 | 第108-109页 |
| 第二节 体外高糖环境下大鼠膀胱DSMCs超微结构观察评估 | 第109-117页 |
| 1 材料与方法 | 第110-112页 |
| 1.1 实验试剂 | 第110页 |
| 1.2 实验仪器 | 第110页 |
| 1.3 主要溶液配制 | 第110-111页 |
| 1.4 细胞分组及干预 | 第111页 |
| 1.5 电镜观察前细胞准备 | 第111页 |
| 1.6 电镜细胞观察及图像采集 | 第111-112页 |
| 2 结果 | 第112-114页 |
| 3 讨论 | 第114-116页 |
| 4 结论 | 第116-117页 |
| 第三节 体外高糖环境下大鼠膀胱DSMCs增殖及凋亡水平的演变 | 第117-127页 |
| 1 材料与方法 | 第118-121页 |
| 1.1 实验试剂 | 第118页 |
| 1.2 实验仪器 | 第118页 |
| 1.3 主要溶液配制 | 第118-119页 |
| 1.4 MTT比色法检测大鼠膀胱DSMCs增殖水平 | 第119页 |
| 1.5 流式细胞术检测大鼠膀胱DSMCs凋亡水平 | 第119-120页 |
| 1.6 图像解读及统计学分析 | 第120-121页 |
| 2 结果 | 第121-124页 |
| 2.1 体外高糖环境下大鼠膀胱DSMCs增殖水平的演变 | 第121-122页 |
| 2.2 体外高糖环境下大鼠膀胱DSMCs凋亡水平的演变 | 第122-124页 |
| 3 讨论 | 第124-126页 |
| 4 结论 | 第126-127页 |
| 第四节 体外高糖环境对大鼠逼尿肌细胞ERS相关性凋亡标志物的表达影响 | 第127-137页 |
| 1 材料与方法 | 第128-131页 |
| 1.1 实验试剂 | 第128页 |
| 1.2 实验仪器 | 第128-129页 |
| 1.3 主要溶液配制 | 第129页 |
| 1.4 三种ERS相关性凋亡标志物蛋白Western blotting检测 | 第129-130页 |
| 1.5 大鼠DSMCs总RNA提取及q RT-PCR检测 | 第130页 |
| 1.6 统计学分析 | 第130-131页 |
| 2 结果 | 第131-134页 |
| 2.1 三种ERS相关性凋亡标志物蛋白的表达及演变 | 第131-132页 |
| 2.2 三种ERS相关性凋亡标志物m RNA的表达及演变 | 第132-133页 |
| 2.3 CHOP及Caspase12表达与DSMCs流式细胞凋亡率演变的相关性分析 | 第133-134页 |
| 3 讨论 | 第134-136页 |
| 4 结论 | 第136-137页 |
| 参考文献 | 第137-145页 |
| 综述 | 第145-178页 |
| 参考文献 | 第162-178页 |
| 致谢 | 第178-179页 |
| 在学期间承担/参与的科研课题与研究成果 | 第179-181页 |
| 个人简介 | 第181页 |
