摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第1章 引言 | 第10-18页 |
1.1 肝组织工程 | 第10-11页 |
1.1.1 肝脏的结构与功能 | 第10页 |
1.1.2 肝组织工程考虑因素 | 第10-11页 |
1.2 组织工程支架材料介绍 | 第11页 |
1.3 细胞外基质 | 第11-14页 |
1.3.1 天然细胞外基质 | 第12页 |
1.3.2 合成细胞外基质 | 第12-13页 |
1.3.3 细胞外基质的几何结构 | 第13-14页 |
1.3.4 细胞外基质中半乳糖的浓度与定向 | 第14页 |
1.4 制造 3D人工肝组织 | 第14-15页 |
1.4.1 细胞片层技术 | 第14-15页 |
1.4.2 多孔藻酸盐支架 | 第15页 |
1.4.3 多孔聚乳酸支架 | 第15页 |
1.4.4 脱细胞支架 | 第15页 |
1.5 血管化在肝组织工程中的应用 | 第15-16页 |
1.5.1 预血管化支架 | 第15-16页 |
1.5.2 体内血管化支架 | 第16页 |
1.6 本研究的主要目的及内容 | 第16-18页 |
1.6.1 本研究的主要目的及意义 | 第16-17页 |
1.6.2 本研究的主要内容 | 第17-18页 |
第2章 人工合成DHP制备生物载体及其在人体肝细胞培养中的应用 | 第18-43页 |
2.1 引言 | 第18页 |
2.2 实验 | 第18-24页 |
2.2.1 实验材料、试剂与仪器 | 第18-19页 |
2.2.2 人工合成DHP | 第19-20页 |
2.2.3 DHP的FT-IR分析 | 第20页 |
2.2.4 DHP的固体~(13)C NMR分析 | 第20页 |
2.2.5 DHP多孔生物载体的制备 | 第20页 |
2.2.6 水凝胶生物载体表征 | 第20-21页 |
2.2.7 人工合成DHP水凝胶生物载体在人体肝细胞L-02的体外培养 | 第21-22页 |
2.2.8 人体肝细胞L-02体外培养状态观察 | 第22-23页 |
2.2.9 人体肝细胞代谢活性的检测 | 第23-24页 |
2.3 结果与讨论 | 第24-41页 |
2.3.1 DHP的FT-IR分析结果 | 第24-25页 |
2.3.2 DHP的固体NMR | 第25页 |
2.3.3 水凝胶生物载体的表面形态 | 第25-26页 |
2.3.4 水凝胶生物载体的溶胀率 | 第26-27页 |
2.3.5 水凝胶生物载体的比表面积与孔径 | 第27页 |
2.3.6 水凝胶生物载体的稳定性 | 第27-28页 |
2.3.7 水凝胶生物载体的FT-IR分析 | 第28-29页 |
2.3.8 水凝胶生物载体的13C NMR分析 | 第29-30页 |
2.3.9 水凝胶生物载体在肝细胞体外培养的观测 | 第30-38页 |
2.3.10检测人体肝细胞代谢活性 | 第38-41页 |
2.4 本章小结 | 第41-43页 |
第3章 3D打印LCC生物载体在人体肝细胞培养中的应用 | 第43-60页 |
3.1 引言 | 第43-51页 |
3.1.1 实验试剂与仪器 | 第43-45页 |
3.1.2 杨木LCC的提取 | 第45-47页 |
3.1.3 成分分析 | 第47页 |
3.1.4 3D打印杨木LCC类血管状生物载体 | 第47-48页 |
3.1.5 生物载体材料的FT-IR分析 | 第48页 |
3.1.6 杨木LCC生物载体的结构表征 | 第48页 |
3.1.7 人肝细胞体外培养 | 第48-49页 |
3.1.8 人体肝细胞L-02体外培养状态观察 | 第49-50页 |
3.1.9 人体肝细胞代谢活性的检测 | 第50-51页 |
3.2 结果与讨论 | 第51-59页 |
3.2.1 3D打印用杨木LCC材料的FT-IR | 第51-52页 |
3.2.2 3D打印用LCC材料的成分分析 | 第52页 |
3.2.3 3D打印生物载体的表面形态 | 第52-53页 |
3.2.4 3D打印生物载体的溶胀率 | 第53页 |
3.2.5 3D打印生物载体的比表面积与孔径 | 第53-54页 |
3.2.6 3D打印生物载体的稳定性 | 第54页 |
3.2.7 3D打印生物载体与肝细胞体外共培养的观测 | 第54-57页 |
3.2.8 检测人体肝细胞代谢活性 | 第57-59页 |
3.3 本章小结 | 第59-60页 |
结论 | 第60-62页 |
参考文献 | 第62-66页 |
致谢 | 第66-67页 |
附录一 攻读硕士学位间参与的科研项目及发表的文章 | 第67页 |