| 摘要 | 第5-8页 |
| abstract | 第8-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-33页 |
| 1.1 丹参分布情况及有效成分的研究 | 第17-20页 |
| 1.2 丹参有效成分的药理作用 | 第20-21页 |
| 1.3 药用植物成分与环境因子关系 | 第21页 |
| 1.4 丹参近缘种的分布及化学组成 | 第21-24页 |
| 1.5 近缘种遗传多样性的研究方法 | 第24-25页 |
| 1.6 丹参及近缘种挥发油的研究进展 | 第25-26页 |
| 1.7 药用植物提取物抗氧化活性研究进展 | 第26-27页 |
| 1.8 药用植物毛状根培养体系 | 第27-28页 |
| 1.9 丹参毛状根及有效成分积累研究进展 | 第28-29页 |
| 1.10 诱导子种类及对药用植物次生代谢调控的研究 | 第29-31页 |
| 1.11 研究目的和意义 | 第31-32页 |
| 1.12 技术路线 | 第32-33页 |
| 第二章 不同生长期丹参及鼠尾草生长、有效成分积累规律研究 | 第33-47页 |
| 2.1 引言 | 第33页 |
| 2.2 材料与方法 | 第33-37页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第33-35页 |
| 2.2.2 仪器和试剂 | 第35页 |
| 2.2.3 丹参及鼠尾草生物量的测定 | 第35页 |
| 2.2.4 丹参及鼠尾草体内有效成分测定 | 第35-37页 |
| 2.2.5 丹参及近缘种酚酸代谢途径关键酶活性测定 | 第37页 |
| 2.3 结果与分析 | 第37-45页 |
| 2.3.1 不同丹参及鼠尾草不同生长期根冠比 | 第37-38页 |
| 2.3.2 不同生长期丹参及鼠尾草叶片有效成分积累规律 | 第38-41页 |
| 2.3.3 不同丹参及鼠尾草酚酸代谢途径关键酶活性比较 | 第41-42页 |
| 2.3.4 不同生长期丹参及鼠尾草根中有效成分积累规律 | 第42-45页 |
| 2.4 讨论 | 第45-47页 |
| 第三章 不同产地甘西鼠尾草有效成分与土壤因子关系分析 | 第47-56页 |
| 3.1 引言 | 第47页 |
| 3.2 材料与方法 | 第47-48页 |
| 3.2.1 仪器和试剂 | 第47页 |
| 3.2.2 样品采集和处理 | 第47页 |
| 3.2.3 甘西鼠尾草叶片和根有效成分的测定 | 第47-48页 |
| 3.2.4 不同甘西鼠尾草环境土壤中元素测定 | 第48页 |
| 3.2.5 数据分析 | 第48页 |
| 3.3 结果与分析 | 第48-53页 |
| 3.3.1 不同甘西鼠尾草根、叶片中酚酸类化合物含量比较 | 第48-49页 |
| 3.3.2 不同甘西鼠尾草根、叶片中丹参酮类化合物含量比较 | 第49-50页 |
| 3.3.3 不同甘西鼠尾草产地土壤元素含量比较 | 第50-51页 |
| 3.3.4 不同甘西鼠尾草根有效成分与土壤元素含量相关性分析 | 第51-52页 |
| 3.3.5 不同甘西鼠尾草叶有效成分与土壤元素含量相关性分析 | 第52-53页 |
| 3.4 讨论 | 第53-56页 |
| 第四章 丹参及鼠尾草SCOT分子标记及DNA条形码分析 | 第56-67页 |
| 4.1 引言 | 第56页 |
| 4.2 材料与方法 | 第56-59页 |
| 4.2.1 试验材料 | 第56页 |
| 4.2.2 仪器和试剂 | 第56-57页 |
| 4.2.3 不同植物材料总DNA提取 | 第57页 |
| 4.2.4 SCoT分子标记PCR条件的优化 | 第57-58页 |
| 4.2.5 psbK–psb I intergenic spacer序列PCR扩增条件 | 第58页 |
| 4.2.6 psbK–psb I PCR扩增结果检测和胶回收 | 第58-59页 |
| 4.2.7 SCoT多态性条带统计及遗传多样性分析 | 第59页 |
| 4.3 结果与分析 | 第59-66页 |
| 4.3.1 不同丹参及鼠尾草总DNA提取结果 | 第59-60页 |
| 4.3.2 SCoT分子标记扩增结果分析 | 第60-63页 |
| 4.3.3 psbK–psb I条形码对不同丹参及近缘种遗传多样性分析 | 第63-66页 |
| 4.4 讨论 | 第66-67页 |
| 第五章 丹参及鼠尾草总酚、总黄酮含量及抗氧化活性比较 | 第67-78页 |
| 5.1 引言 | 第67页 |
| 5.2 材料与方法 | 第67-69页 |
| 5.2.1 试验材料 | 第67页 |
| 5.2.2 仪器和试剂 | 第67-68页 |
| 5.2.3 样品处理及制备 | 第68页 |
| 5.2.4 总黄酮含量测定 | 第68页 |
| 5.2.5 总酚含量测定 | 第68-69页 |
| 5.2.6 铁离子还原能力测定 | 第69页 |
| 5.3 结果与分析 | 第69-76页 |
| 5.3.1 丹参及鼠尾草不同部位总黄酮含量比较 | 第69-71页 |
| 5.3.2 丹参及鼠尾草不同部位总酚含量比较 | 第71-73页 |
| 5.3.3 丹参及鼠尾草不同部位提取物铁离子还原能力比较 | 第73-74页 |
| 5.3.4 丹参及鼠尾草不同部位提取物成分及活性的相关性分析 | 第74-76页 |
| 5.4 讨论 | 第76-78页 |
| 第六章 丹参及鼠尾草地上部分挥发油成分与酚酸含量比较 | 第78-88页 |
| 6.1 引言 | 第78页 |
| 6.2 材料与方法 | 第78-80页 |
| 6.2.1 试验材料 | 第78页 |
| 6.2.2 仪器和试剂 | 第78-79页 |
| 6.2.3 样品采集及前处理 | 第79页 |
| 6.2.4 挥发油提取及GC–MS条件 | 第79页 |
| 6.2.5 HPLC分析不同部位酚酸含量 | 第79-80页 |
| 6.2.6 数据处理 | 第80页 |
| 6.3 结果与分析 | 第80-86页 |
| 6.3.1 不同鼠尾草不同部位挥发油含量比较 | 第80页 |
| 6.3.2 不同鼠尾草不同部位挥发油化学组成 | 第80-83页 |
| 6.3.3 基于挥发油化学组成的不同鼠尾草关系比较 | 第83-85页 |
| 6.3.4 不同鼠尾草不同部位酚酸含量比较 | 第85-86页 |
| 6.4 讨论 | 第86-88页 |
| 第七章 绒毛鼠尾草毛状根的诱导、生长及有效成分的积累 | 第88-96页 |
| 7.1 引言 | 第88页 |
| 7.2 材料与方法 | 第88-91页 |
| 7.2.1 试验材料 | 第88页 |
| 7.2.2 仪器和试剂 | 第88-89页 |
| 7.2.3 绒毛鼠尾草无菌苗培养 | 第89页 |
| 7.2.4 农杆菌活化及侵染 | 第89页 |
| 7.2.5 绒毛鼠尾草毛状根阳性鉴定 | 第89-90页 |
| 7.2.6 绒毛鼠尾草毛状根培养条件筛选及生长动力学研究 | 第90页 |
| 7.2.7 毛状根有效成分的测定 | 第90-91页 |
| 7.2.8 不同生长时间毛状根中有效成分的测定 | 第91页 |
| 7.3 结果与分析 | 第91-94页 |
| 7.3.1 毛状根的诱导和阳性鉴定 | 第91-92页 |
| 7.3.2 绒毛鼠尾草毛状根中丹参酮的测定 | 第92-93页 |
| 7.3.3 绒毛鼠尾草毛状根生长动力学分析 | 第93-94页 |
| 7.3.4 不同生长时期毛状根有效成分的积累规律 | 第94页 |
| 7.4 讨论 | 第94-96页 |
| 第八章 绒毛鼠尾草丹参酮代谢途径HMGR、DXR、IPPI和GGPPS基因片段的同源克隆 | 第96-104页 |
| 8.1 引言 | 第96页 |
| 8.2 材料和方法 | 第96-99页 |
| 8.2.1 试验材料 | 第96-97页 |
| 8.2.2 仪器和试剂 | 第97页 |
| 8.2.3 毛状根总RNA提取 | 第97页 |
| 8.2.4 毛状根cDNA的获得 | 第97-98页 |
| 8.2.5 HMGR、DXR、IPPI和GGPPS基因片段扩增引物设计 | 第98页 |
| 8.2.6 毛状根中不同基因片段的PCR扩增 | 第98-99页 |
| 8.2.7 回收产物的连接、转化、克隆和测序 | 第99页 |
| 8.2.8 基因片段的序列比对 | 第99页 |
| 8.3 结果与分析 | 第99-102页 |
| 8.3.1 绒毛鼠尾草毛状根RNA提取结果 | 第99-100页 |
| 8.3.2 HMGR、DXR、IPPI和GGPPS基因片段扩增结果 | 第100页 |
| 8.3.3 HMGR、DXR、IPPI和GGPPS基因片段连接转化的单克隆菌落鉴定 | 第100页 |
| 8.3.4 HMGR、DXR、IPPI和GGPPS基因片段序列信息 | 第100-102页 |
| 8.3.5 HMGR、DXR、IPPI和GGPPS基因片段同源性分析 | 第102页 |
| 8.4 讨论 | 第102-104页 |
| 第九章 诱导子对绒毛鼠尾草毛状根中丹参酮化合物积累的调控 | 第104-118页 |
| 9.1 引言 | 第104页 |
| 9.2 材料与方法 | 第104-106页 |
| 9.2.1 试验材料 | 第104页 |
| 9.2.2 仪器和试剂 | 第104-105页 |
| 9.2.3 诱导子的制备及添加 | 第105页 |
| 9.2.4 丹参酮类化合物HPLC分析 | 第105页 |
| 9.2.5 毛状根总RNA提取及cDNA获得 | 第105页 |
| 9.2.6 qRT-PCR分析丹参酮代谢途径相关基因表达 | 第105-106页 |
| 9.2.7 数据分析 | 第106页 |
| 9.3 结果与分析 | 第106-114页 |
| 9.3.1 不同浓度诱导子对绒毛鼠尾草毛状根生长的影响 | 第106-109页 |
| 9.3.2 不同浓度诱导子对绒毛鼠尾草毛状根丹参酮含量的影响 | 第109-110页 |
| 9.3.3 不同处理时间诱导子对绒毛鼠尾草毛状根生长和丹参酮含量的影响 | 第110-111页 |
| 9.3.4 诱导子对绒毛鼠尾草毛状根中丹参酮代谢相关基因表达的影响 | 第111-114页 |
| 9.4 讨论 | 第114-118页 |
| 第十章 总讨论与结论 | 第118-122页 |
| 10.1 总讨论 | 第118-120页 |
| 10.2 总结论 | 第120-121页 |
| 10.3 创新点 | 第121-122页 |
| 参考文献 | 第122-138页 |
| 附录 | 第138-148页 |
| 致谢 | 第148-149页 |
| 个人简介 | 第149页 |
