| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-31页 |
| 1.1 干旱胁迫对植物生长的影响 | 第12-13页 |
| 1.2 ROS信号系统 | 第13-21页 |
| 1.2.1 植物响应胁迫的信号系统 | 第14-17页 |
| 1.2.2 在SAA中ROS和Ca~（2+）波的作用 | 第17-18页 |
| 1.2.3 ABA调控的ROS钙波积累 | 第18-20页 |
| 1.2.4 最为稳定的ROS成员H_2O_2 | 第20-21页 |
| 1.3 保卫细胞和副卫细胞 | 第21-22页 |
| 1.4 水孔蛋白在控制植物水分关系中的作用 | 第22-29页 |
| 1.4.1 水孔蛋白结构简介 | 第22-23页 |
| 1.4.2 高等植物中的水孔蛋白 | 第23页 |
| 1.4.3 水孔蛋白的定位 | 第23-24页 |
| 1.4.4 水孔蛋白的门控和抑制 | 第24-26页 |
| 1.4.5 水孔蛋白作为“看门”细胞和质外体屏障 | 第26页 |
| 1.4.6 水孔蛋白随昼夜生物钟调节 | 第26-27页 |
| 1.4.7 PIPs的生物合成以及他们进出细胞膜的路径 | 第27-28页 |
| 1.4.8 水孔蛋白在运输H_2O_2方面的功能 | 第28-29页 |
| 1.5 玉米中水孔蛋白ZMPIPS | 第29-31页 |
| 第二章 干旱对冬小麦叶片气孔、ROS代谢和光合特性的影响 | 第31-42页 |
| 2.1 材料与方法 | 第32-35页 |
| 2.1.1 盆栽小麦及控水控肥处理 | 第32-33页 |
| 2.1.2 气孔导度、蒸腾速率、光合速率的测定 | 第33页 |
| 2.1.3 ROS含量测定 | 第33-34页 |
| 2.1.4 酶活性测量 | 第34页 |
| 2.1.5 叶表皮H_2O_2的细胞化学定位 | 第34页 |
| 2.1.6 气孔密度和分布的计算与观察 | 第34-35页 |
| 2.1.7 PEG6000诱导保卫细胞H_2O_2的产生 | 第35页 |
| 2.1.8 光照黑暗处理对H_2O_2的分布的影响 | 第35页 |
| 2.1.9 数据处理 | 第35页 |
| 2.2 结果与分析 | 第35-40页 |
| 2.2.1 水分亏缺对小麦叶片光合特性的影响 | 第35-36页 |
| 2.2.2 水分亏缺对小麦叶片气孔密度的影响 | 第36页 |
| 2.2.3 水分亏缺对小麦叶片过氧化程度的影响 | 第36-38页 |
| 2.2.4 水分亏缺对小麦叶片保护酶活性的影响 | 第38-39页 |
| 2.2.5 光照黑暗处理对有短细胞的小麦叶片气孔中H_2O_2含量和分布的影响 | 第39-40页 |
| 2.2.6 PEG处理对长有短细胞的小麦叶片气孔中H_2O_2含量和分布的影响 | 第40页 |
| 2.3 讨论与分析 | 第40-41页 |
| 2.4 结论 | 第41-42页 |
| 第三章 玉米叶片保卫细胞和副卫细胞间H_2O_2的转运途径分析 | 第42-53页 |
| 3.1 植物材料的培养 | 第43-46页 |
| 3.1.1 玉米幼苗的培养 | 第43页 |
| 3.1.2 ZmPIPs的mRNA定量分析 | 第43-45页 |
| 3.1.3 光照或黑暗处理后H_2O_2在植物叶片中的定位 | 第45-46页 |
| 3.1.4 外加抑制剂HgCl_2对植物叶片表皮中H_2O_2分布的影响 | 第46页 |
| 3.1.5 外加抑制剂AgNO_3对植物叶片表皮中H_2O_2分布的影响 | 第46页 |
| 3.1.6 外加H_2O_2对植物叶片表皮中H_2O_2分布的影响 | 第46页 |
| 3.2 结果与分析 | 第46-51页 |
| 3.2.1 有无短细胞叶表皮保卫细胞和副卫细胞中H_2O_2分布的差异分析 | 第46-47页 |
| 3.2.2 水孔蛋白抑制剂HgCl2和AgNO3对H_2O_2在保卫细胞和副卫细胞中分布的影响 | 第47-51页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第51-52页 |
| 3.4 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 作者简介 | 第65页 |
