| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第9-23页 |
| 1.1 肝癌与miRNA的关系 | 第9-14页 |
| 1.1.1 miRNA的生物功能 | 第9-10页 |
| 1.1.2 miRNA的检测方法 | 第10-14页 |
| 1.2 量子点（QDs）的介绍 | 第14-18页 |
| 1.2.1 QDs的制备和在生物检测中的应用 | 第15-16页 |
| 1.2.2 量子点在生物检测中的应用 | 第16-18页 |
| 1.3 MoS_2的研究 | 第18-21页 |
| 1.3.1 MoS_2的介绍 | 第18页 |
| 1.3.2 MoS_2纳米片的制备 | 第18-19页 |
| 1.3.3 基于MoS_2纳米片光学检测的生物应用 | 第19-21页 |
| 1.4 本文选题及主要研究内容 | 第21-23页 |
| 第2章 新型的QDs探针共振光散射信号放大检测miRNA-122 | 第23-33页 |
| 2.1 引言 | 第23-24页 |
| 2.2 实验部分 | 第24-26页 |
| 2.2.1 实验仪器和试剂 | 第24-25页 |
| 2.2.2 MPA-CdTe QDs和QDs-DNA探针的制备 | 第25页 |
| 2.2.3 CdTe QDs与miRNA-122的杂交反应 | 第25-26页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第26-30页 |
| 2.3.1 反应原理的光谱实验 | 第26-27页 |
| 2.3.2 反应条件的优化 | 第27-30页 |
| 2.4 miRNA-122选择性 | 第30页 |
| 2.5 线性以及检测限 | 第30-31页 |
| 2.6 miRNA-122在血清样品中的回收率 | 第31-32页 |
| 2.7 本章小结 | 第32-33页 |
| 第3章 双色量子点探针对miRNA-122和miRNA-199a/b-3p的同时检测 | 第33-46页 |
| 3.1 引言 | 第33-34页 |
| 3.2 实验部分 | 第34-37页 |
| 3.2.1 实验仪器和试剂 | 第34-35页 |
| 3.2.2 MPA-CdTe@CdS QDs和QDs-DNA探针的制备 | 第35-36页 |
| 3.2.3 AuNPs和AuNPs-S1/S2的合成 | 第36-37页 |
| 3.2.4 CdTe@CdS QDs与miRNA-122的杂交反应 | 第37页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第37-41页 |
| 3.3.1 纳米粒子的表征 | 第37-38页 |
| 3.3.2 反应原理的光谱实验 | 第38-39页 |
| 3.3.3 反应条件的优化 | 第39-41页 |
| 3.4 线性以及检测限的确定 | 第41-43页 |
| 3.5 miRNA-122和miRNA-199a/b-3p的选择性实验 | 第43页 |
| 3.6 miRNA-122和miRNA-199a/b-3p在血清样品中的回收率 | 第43-44页 |
| 3.7 miRNA-122和miRNA-199a/b-3p在细胞提取液中的同时检测 | 第44-45页 |
| 3.8 本章小结 | 第45-46页 |
| 第4章 基于MoS2的荧光传感器通过杂交链反应（HCR）技术检测miRNA-199a/b-3p | 第46-57页 |
| 4.1 引言 | 第46-47页 |
| 4.2 实验部分 | 第47-49页 |
| 4.2.1 实验仪器和试剂 | 第47-48页 |
| 4.2.2 MoS_2纳米片的制备 | 第48-49页 |
| 4.2.3 荧光测试 | 第49页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第49-56页 |
| 4.3.1 MoS_2纳米片的表征 | 第49-50页 |
| 4.3.2 对于目标物检测的可行性实验 | 第50-51页 |
| 4.3.3 G-四联体形成的判断与表征 | 第51-52页 |
| 4.3.4 反应条件的优化 | 第52-53页 |
| 4.3.5 定量检测miRNA-199a/b-3p | 第53-54页 |
| 4.3.6 miRNA-199a/b-3p选择性实验 | 第54-55页 |
| 4.3.7 miRNA-199a/b-3p在不同的细胞提取液中的检测 | 第55-56页 |
| 4.4 本章小结 | 第56-57页 |
| 结论与展望 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 个人简历 | 第67页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第67页 |
