| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第12-26页 |
| 1.1 荧光生物传感器 | 第12-13页 |
| 1.2 银纳米簇 | 第13-20页 |
| 1.2.1 银纳米簇的合成 | 第13-16页 |
| 1.2.2 银纳米簇在荧光生物传感器中的应用 | 第16-20页 |
| 1.3 核酸染料 | 第20-24页 |
| 1.3.1 溴化乙锭核酸染料 | 第20-21页 |
| 1.3.2 SYBR Green Ⅰ核酸染料 | 第21-22页 |
| 1.3.3 SYBR Green Ⅱ核酸染料 | 第22页 |
| 1.3.4 SYBR Gold核酸染料 | 第22-23页 |
| 1.3.5 GoldView型核酸染料 | 第23页 |
| 1.3.6 DAPI核酸染料 | 第23-24页 |
| 1.4 本文构思 | 第24-26页 |
| 第2章 基于银纳米簇的免标记荧光方法用于过氧化氢和葡萄糖的灵敏检测 | 第26-41页 |
| 2.1 前言 | 第26-27页 |
| 2.2 实验部分 | 第27-29页 |
| 2.2.1 试剂和仪器 | 第27-28页 |
| 2.2.2 以DNA为模板的银纳米簇的制备 | 第28页 |
| 2.2.3 凝胶电泳分析实验 | 第28页 |
| 2.2.4 过氧化氢检测实验 | 第28页 |
| 2.2.5 葡萄糖检测及抗氧化物实验 | 第28-29页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第29-39页 |
| 2.3.1 传感器的设计原理 | 第29-30页 |
| 2.3.2 凝胶电泳分析 | 第30-31页 |
| 2.3.3 银纳米簇的表征 | 第31-32页 |
| 2.3.4 过氧化氢检测的可行性考察 | 第32-33页 |
| 2.3.5 过氧化氢的检测分析 | 第33-34页 |
| 2.3.6 葡萄糖检测的可行性考察 | 第34页 |
| 2.3.7 葡萄糖检测的实验条件优化 | 第34-36页 |
| 2.3.8 葡萄糖的检测分析 | 第36-37页 |
| 2.3.9 葡萄糖检测的选择性考察 | 第37-38页 |
| 2.3.10 实际样品中葡萄糖的检测分析 | 第38-39页 |
| 2.3.11 验证·OH的产生 | 第39页 |
| 2.4 小结 | 第39-41页 |
| 第3章 基于核酸染料和芬顿反应的荧光生物传感器检测过氧化氢和葡萄糖 | 第41-51页 |
| 3.1 前言 | 第41-43页 |
| 3.2 实验部分 | 第43-44页 |
| 3.2.1 试剂和仪器 | 第43页 |
| 3.2.2 过氧化氢检测实验 | 第43页 |
| 3.2.3 葡萄糖检测实验 | 第43-44页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第44-50页 |
| 3.3.1 传感器的设计原理 | 第44页 |
| 3.3.2 SYBR Gold用量优化 | 第44-45页 |
| 3.3.3 过氧化氢的检测分析 | 第45-46页 |
| 3.3.4 葡萄糖检测的可行性考察 | 第46-47页 |
| 3.3.5 葡萄糖检测的实验条件优化 | 第47-48页 |
| 3.3.6 葡萄糖的检测分析 | 第48-49页 |
| 3.3.7 葡萄糖检测的选择性考察 | 第49-50页 |
| 3.4 小结 | 第50-51页 |
| 第4章 基于单链DNA构型转变及核酸染料的荧光探针检测过氧化氢和葡萄糖 | 第51-62页 |
| 4.1 前言 | 第51-53页 |
| 4.2 实验部分 | 第53-54页 |
| 4.2.1 试剂和仪器 | 第53页 |
| 4.2.2 过氧化氢检测实验 | 第53页 |
| 4.2.3 葡萄糖及抗氧化物检测实验 | 第53-54页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第54-61页 |
| 4.3.1 传感器的设计原理 | 第54-55页 |
| 4.3.2 过氧化氢的检测分析 | 第55-56页 |
| 4.3.3 葡萄糖检测的可行性考察 | 第56-57页 |
| 4.3.4 葡萄糖检测的实验条件优化 | 第57-58页 |
| 4.3.5 葡萄糖的检测分析 | 第58-59页 |
| 4.3.6 葡萄糖检测的选择性考察 | 第59-60页 |
| 4.3.7 抗氧化物的检测分析 | 第60-61页 |
| 4.4 小结 | 第61-62页 |
| 结论 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-80页 |
| 附录A 攻读学位期间发表的学术论文 | 第80-81页 |
| 致谢 | 第81页 |
