| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第11-27页 |
| 1、硒与癌症 | 第11-14页 |
| 1.1 硒的概述 | 第11-12页 |
| 1.2 Na_2SeO_3抗癌机制研究进展 | 第12-14页 |
| 2、细胞凋亡与线粒体凋亡途径 | 第14-16页 |
| 3、细胞器定位荧光探针的发展 | 第16-18页 |
| 4、介孔二氧化硅纳米材料的靶向应用 | 第18-20页 |
| 5、论文的选题背景、意义及实验思路 | 第20-22页 |
| 参考文献 | 第22-27页 |
| 第二章 靶向不同细胞器的H_2Se近红外纳米荧光探针的设计合成及分析应用 | 第27-60页 |
| 1、引言 | 第27-28页 |
| 2、实验部分 | 第28-41页 |
| 2.1 仪器与试剂 | 第28-30页 |
| 2.2 介孔二氧化硅的制备 | 第30-31页 |
| 2.3 三种纳米定位探针的合成 | 第31-33页 |
| 2.3.1 负载的分子探针NIR-H_2Se的合成路线 | 第31页 |
| 2.3.2 三种纳米定位探针（Cyto-NIR-H_2Se-MSN、Lyso-NIR-H_2Se-MSN、Mito-NIR-H_2Se-MSN）的合成 | 第31-32页 |
| 2.3.3 Zeta电势表征 | 第32页 |
| 2.3.4 介孔二氧化硅中分子探针NIR-H_2Se负载量的确定 | 第32-33页 |
| 2.4 三种纳米定位探针的化学体系分析 | 第33-35页 |
| 2.4.1 配制待测物H_2Se储备溶液 | 第33页 |
| 2.4.2 pH值对三种纳米定位探针荧光响应的影响 | 第33页 |
| 2.4.3 三种纳米定位探针对待测物H_2Se的响应情况 | 第33-34页 |
| 2.4.4 三种纳米定位探针的选择性测定 | 第34-35页 |
| 2.4.5 三种纳米定位探针的反应动力学 | 第35页 |
| 2.5 生物体系分析 | 第35-40页 |
| 2.5.1 细胞培养 | 第35-36页 |
| 2.5.2 MTT实验 | 第36-37页 |
| 2.5.3 三种纳米传感器内吞途径研究 | 第37-38页 |
| 2.5.4 定位实验 | 第38-39页 |
| 2.5.5 乏氧条件下Na_2SeO_3诱导肿瘤细胞凋亡过程H_2Se的亚细胞器分布情况 | 第39-40页 |
| 2.6 罗丹明123对Na_2SeO_3诱导HepG2细胞凋亡过程中线粒体膜电位的测定 | 第40-41页 |
| 3、结果与讨论 | 第41-57页 |
| 3.1 三种纳米定位探针的各项表征 | 第41-44页 |
| 3.1.1 介孔二氧化硅红外表征 | 第41-42页 |
| 3.1.2 三种纳米定位探针电镜表征 | 第42-44页 |
| 3.2 化学体系测定 | 第44-49页 |
| 3.2.1 pH值对三种纳米定位探针响应影响 | 第44-45页 |
| 3.2.2 三种纳米定位探针与H_2Se的荧光响应 | 第45-46页 |
| 3.2.3 三种纳米定位探针选择性的测定 | 第46-49页 |
| 3.2.4 三种纳米定位探针反应动力学 | 第49页 |
| 3.3 生物体系分析 | 第49-57页 |
| 3.3.1 细胞毒性实验 | 第49-50页 |
| 3.3.2 三种纳米定位探针的细胞内吞路径实验 | 第50-51页 |
| 3.3.3 共定位实验 | 第51-53页 |
| 3.3.4 乏氧条件下Na_2SeO_3诱导肿瘤细胞凋亡过程亚细胞器内H_2Se检测 | 第53-55页 |
| 3.3.5 罗丹明123对HepG2细胞凋亡过程中线粒体膜电位的测定 | 第55-57页 |
| 4、本章小结 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-60页 |
| 第三章 Na_2SeO_3诱导肿瘤细胞凋亡过程中线粒体内H_2Se和O_2~(·?)双检测及凋亡机制研究 | 第60-81页 |
| 1、引言 | 第60-62页 |
| 2、实验部分 | 第62-69页 |
| 2.1 仪器与试剂 | 第62-64页 |
| 2.2 线粒体双检测定位探针的合成 | 第64-65页 |
| 2.2.1 Zeta电势 | 第64页 |
| 2.2.2 介孔二氧化硅中NIR-H_2Se及DHE的负载量确定 | 第64-65页 |
| 2.3 化学体系H_2Se和O_2~(·?)的双检测 | 第65-67页 |
| 2.3.1 待测物H_2Se和O_2~(·?)的配制 | 第65页 |
| 2.3.2 pH对线粒体双检测定位探针（Mito-N-D-MSN）响应影响 | 第65-66页 |
| 2.3.3 线粒体双检测定位探针（Mito-N-D-MSN）对H_2Se的响应 | 第66页 |
| 2.3.4 线粒体双检测定位探针（Mito-N-D-MSN）对O_2~(·?)的响应 | 第66页 |
| 2.3.5 线粒体双检测定位探针（Mito-N-D-MSN）的选择性测定 | 第66-67页 |
| 2.3.6 线粒体双检测定位探针（Mito-N-D-MSN）反应动力学 | 第67页 |
| 2.4 生物体系研究 | 第67-69页 |
| 2.4.1 乏氧条件下Na_2SeO_3诱导肿瘤细胞凋亡过程中线粒体内H_2Se和O_2~(·?) 双检测 | 第67-68页 |
| 2.4.2 常氧条件下Na_2SeO_3诱导肿瘤细胞凋亡过程中线粒体内H_2Se和O_2~(·?) 双检测 | 第68-69页 |
| 3、结果与讨论 | 第69-78页 |
| 3.1 表征 | 第69-70页 |
| 3.1.1 电镜表征 | 第69页 |
| 3.1.2 Zeta电势 | 第69-70页 |
| 3.1.3 NIR-H_2Se与DHE负载量的确定 | 第70页 |
| 3.2 化学体系H_2Se和O_2~(·-)的双检测 | 第70-75页 |
| 3.2.1 pH值对双检测响应影响 | 第70-71页 |
| 3.2.2 线粒体双检测定位探针（Mito-N-D-MSN）的荧光响应 | 第71-72页 |
| 3.2.3 线粒体双检测定位探针（Mito-N-D-MSN）选择性的测定 | 第72-74页 |
| 3.2.4 线粒体双检测定位探针（Mito-N-D-MSN）反应动力学 | 第74-75页 |
| 3.3 生物体系分析 | 第75-78页 |
| 3.3.1 乏氧条件下Na_2SeO_3诱导肿瘤细胞凋亡过程中线粒体内H_2Se和O_2~(·?) 双检测 | 第75-76页 |
| 3.3.2 常氧条件下Na_2SeO_3诱导肿瘤细胞凋亡过程中线粒体内H_2Se和O_2~(·?) 双检测 | 第76-78页 |
| 4、本章小结 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-81页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文和参与的课题 | 第81-82页 |
| 致谢 | 第82页 |
