摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4页 |
第一章 绪论 | 第7-17页 |
1.1 锂的生物学性质 | 第7-9页 |
1.1.1 锂的理化性质 | 第7页 |
1.1.2 锂在治疗精神疾病方面的应用 | 第7-8页 |
1.1.3 锂在其他疾病中的应用 | 第8-9页 |
1.1.4 锂的毒副作用及预防措施 | 第9页 |
1.2 锂盐的作用机制 | 第9-11页 |
1.3 酿酒酵母对高盐胁迫的应答机制 | 第11-14页 |
1.4 酿酒酵母的VPS基因家族 | 第14-15页 |
1.5 本课题研究的目的和意义 | 第15-17页 |
第二章 实验材料与方法 | 第17-28页 |
2.1 实验材料 | 第17-24页 |
2.1.1 实验试剂 | 第17-18页 |
2.1.2 主要仪器设备 | 第18-19页 |
2.1.3 实验所用菌株、质粒和引物 | 第19-22页 |
2.1.4 试剂与培养基 | 第22-24页 |
2.2 实验方法 | 第24-28页 |
2.2.1 碱裂解法小量提取质粒DNA | 第24-25页 |
2.2.2 醋酸锂法转化质粒到酿酒酵母细胞 | 第25页 |
2.2.3 酵母 β-半乳糖苷酶(LacZ)活性的测定 | 第25-26页 |
2.2.4 PCR扩增目的片段DNA | 第26页 |
2.2.5 酿酒酵母的DNA片段转化 | 第26页 |
2.2.6 玻璃珠法提取酿酒酵母的基因组DNA | 第26-27页 |
2.2.7 酿酒酵母的荧光定位观察 | 第27-28页 |
第三章 结果与讨论 | 第28-42页 |
3.1 锂离子耐受相关酿酒酵母基因缺失菌株中ENA1转录水平的测定 | 第28-34页 |
3.1.1 缺失后导致ENA1转录水平升高的基因功能分析 | 第29-31页 |
3.1.2 缺失后导致ENA1转录水平与野生型菌株无显著性差异的基因功能分析 | 第31页 |
3.1.3 缺失后导致ENA1转录水平低于野生型菌株的基因功能分析 | 第31-34页 |
3.2 Ena1p的N端整合GFP标签策略 | 第34-36页 |
3.3 GFP-Ena1融合蛋白在酵母基因缺失株细胞中的荧光定位 | 第36-42页 |
3.3.1 GFP-Ena1p定位于细胞质膜,液泡膜和液泡腔中的单基因缺失菌株 | 第37-38页 |
3.3.2 GFP-Ena1p定位于细胞质膜和液泡膜的单基因缺失菌株 | 第38-39页 |
3.3.3 GFP-Ena1p仅定位于细胞质膜的单基因缺失株 | 第39-42页 |
主要结论与展望 | 第42-43页 |
主要结论 | 第42页 |
展望 | 第42-43页 |
致谢 | 第43-44页 |
参考文献 | 第44-49页 |
附录:作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第49页 |