| 中文摘要 | 第1-9页 |
| 英文摘要 | 第9-13页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 1. 材料 | 第15-19页 |
| ·主要试剂 | 第15-16页 |
| ·主要仪器设备 | 第16-17页 |
| ·实验主要试剂的配制 | 第17-19页 |
| ·缓冲液的配制 | 第17-18页 |
| ·完全培养基的制备 | 第18-19页 |
| 2 实验方法 | 第19-31页 |
| ·P3 代 hMSCs 的获取 | 第19-23页 |
| ·hMSCs 的分离与培养 | 第19-20页 |
| ·hMSCs的冻存和复苏 | 第20-21页 |
| ·hMSCs的传代培养 | 第21-22页 |
| ·hMSCs的生长曲线绘制 | 第22页 |
| ·hMSCs 细胞表面标志的检测 | 第22-23页 |
| ·脱细胞骨基质的制备 | 第23-26页 |
| ·股骨头获取及脱细胞流程 | 第23-24页 |
| ·脱细胞骨基质检测 | 第24-26页 |
| ·脱细胞骨基质与hMSCs共培养及观察 | 第26-31页 |
| ·脱细胞骨基质与hMSCs的混合培养 | 第26-27页 |
| ·培养24小时采用细胞计数法对hMSCs与骨基质黏附率进行评价以及激光共聚焦显微镜下观察早期细胞黏附情况 | 第27-29页 |
| ·培养72小时组、7天组均采用HE染色对hMSCs与骨基质黏附进行评价 | 第29-31页 |
| 3 结果 | 第31-37页 |
| ·细胞形态学观察 | 第31-32页 |
| ·hMSCs的原代培养 | 第31页 |
| ·hMSCs的传代培养与增殖 | 第31-32页 |
| ·hMSCs生长曲线的绘制结果 | 第32页 |
| ·流式细胞仪检测细胞表面标志物 | 第32页 |
| ·脱细胞骨基质材料的观察 | 第32-33页 |
| ·hMSCs 与脱细胞骨基质共培养的观察 | 第33-37页 |
| ·共培养 24 小时 hMSCs 与骨基质黏附评价及激光共聚焦显微镜下观察 | 第33-35页 |
| ·共培养 72 小时及 7 天后的共培养复合体的 HE 染色的结果 | 第35-37页 |
| 4 讨论 | 第37-44页 |
| ·hMSCs 获取方法选择 | 第37-38页 |
| ·hMSCs 鉴定 | 第38-39页 |
| ·骨组织脱细胞方法的选择 | 第39-40页 |
| ·脱细胞骨基质残留细胞的检测及灭菌消毒 | 第40-41页 |
| ·脱细胞骨基质材料与 hMSCs 的粘附生长 | 第41-44页 |
| 结论 | 第44-45页 |
| 实验存在的问题与展望 | 第45-46页 |
| 附图 | 第46-52页 |
| 参考文献 | 第52-56页 |
| 英汉缩略词对照表 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 综述 | 第58-68页 |
| 参考文献 | 第63-68页 |
| 附件 | 第68-72页 |
