| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 前言 | 第12-13页 |
| 材料和方法 | 第13-22页 |
| 1.材料 | 第13-16页 |
| ·细胞及细胞培养相关试剂 | 第13页 |
| ·细菌培养相关试剂 | 第13页 |
| ·质粒转化与提取相关试剂 | 第13-14页 |
| ·转染相关试剂 | 第14页 |
| ·western blot 相关试剂 | 第14页 |
| ·其它试剂 | 第14-15页 |
| ·实验试剂的配制 | 第15-16页 |
| ·主要仪器 | 第16页 |
| 2.方法 | 第16-22页 |
| ·细胞培养 | 第16页 |
| ·质粒的转化及提取 | 第16-17页 |
| ·细胞总 RNA 提取 | 第17-18页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第18页 |
| ·E6 的逆转录-聚合酶链式反应 | 第18-19页 |
| ·MG132 浓度对细胞增殖的影响 | 第19页 |
| ·脂质体转染及共转染 | 第19-20页 |
| ·Western blot | 第20-22页 |
| ·统计学处理 | 第22页 |
| 结果 | 第22-28页 |
| 1.HPV16 E6 降低内源性 Rap1GAP 的蛋白表达 | 第22-24页 |
| ·质粒制备 | 第22-23页 |
| ·HPV16 E6 对内源性 Rap1GAP 表达的影响 | 第23-24页 |
| 2. HPV16 E6 通过泛素蛋白酶体通路降解 Rap1GAP | 第24-28页 |
| ·细胞转染效率检测 | 第24-26页 |
| ·MG132 浓度的的确定 | 第26-27页 |
| ·HPV16 E6 通过泛素蛋白酶体途径降解外源性Rap1GAP蛋白 | 第27-28页 |
| 讨论 | 第28-33页 |
| 结论 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-39页 |
| 综述 | 第39-49页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
