摘要 | 第1-9页 |
ABSTRACT | 第9-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-28页 |
1 吡虫啉抗性研究进展 | 第12-16页 |
·吡虫啉简介 | 第12-13页 |
·吡虫啉抗性产生现状 | 第13-14页 |
·吡虫啉抗性机理研究概况 | 第14-16页 |
2 复配杀虫剂 | 第16-21页 |
·复配杀虫剂简介 | 第17页 |
·复配杀虫剂的评价方法(研究方法) | 第17-19页 |
·国内吡虫啉复配杀虫剂的研究情况 | 第19-21页 |
3 本文复配所用杀虫剂简介 | 第21-24页 |
·吡蚜酮简介 | 第21-23页 |
·呋虫胺简介 | 第23-24页 |
4 研究目的与意义 | 第24-28页 |
·褐飞虱对吡虫啉的抗性生化机制 | 第24-25页 |
·褐飞虱对吡蚜酮的生测体系的建立 | 第25页 |
·吡虫啉增效复配剂的筛选 | 第25-26页 |
·吡虫啉替代药剂呋虫胺的增效复配 | 第26-28页 |
第二章 褐飞虱Nilaparvata lugens(Stal)对吡虫啉的抗性生化机制研究 | 第28-40页 |
摘要 | 第28页 |
1 材料和方法 | 第28-33页 |
·供试虫源及主要试剂 | 第28-29页 |
·毒力的生物测定 | 第29页 |
·mRNA水平的检测 | 第29-31页 |
·CYP6AY1基因在大肠杆菌(E.coli)上的表达和膜蛋白的提取 | 第31-32页 |
·酶活的测定 | 第32页 |
·RNA干扰 | 第32-33页 |
2 结果 | 第33-37页 |
·生物测定和增效作用的评价 | 第33页 |
·细胞色素P450单加氧酶系mRNA水平的检测 | 第33-34页 |
·CYP6AY1基因的功能性表达以及吡虫啉的代谢 | 第34-35页 |
·CYP6AY1的RNA干扰 | 第35-36页 |
·田间种群褐飞虱的抗性水平以及CYP6AY1基因的mRNA表达水平的测定 | 第36-37页 |
3 讨论 | 第37-40页 |
第三章 飞虱对吡蚜酮的生测体系的建立 | 第40-54页 |
摘要 | 第40页 |
1 材料和装置 | 第40-42页 |
·试验用虫 | 第40页 |
·试验药剂 | 第40-41页 |
·试验装置 | 第41-42页 |
2 生物测定方法及流程 | 第42-46页 |
·生测若虫的准备 | 第42页 |
·吡蚜酮母液的配制 | 第42-43页 |
·吡蚜酮浸苗处理药剂的配制 | 第43页 |
·浸药处理 | 第43页 |
·生测小苗的接虫前处理 | 第43-44页 |
·接虫 | 第44页 |
·结果检查与数据处理 | 第44-46页 |
3 试验条件参数分析 | 第46-52页 |
·有机溶剂的选择及对生物测定的影响 | 第46-48页 |
·药剂处理时间的选择 | 第48-49页 |
·表面活性剂Triton X-100的选择及对生物测定的影响 | 第49-51页 |
·浸药时间对生物测定的影响 | 第51页 |
·对照死亡率及试验准确度分析 | 第51-52页 |
4 讨论 | 第52-54页 |
第四章 吡虫啉-吡蚜酮高效复配剂的筛选及田间药效试验 | 第54-68页 |
摘要 | 第54页 |
1 材料与方法 | 第54-57页 |
·试验材料 | 第54-55页 |
·药剂的配制方法 | 第55页 |
·药剂毒力的生物测定 | 第55-56页 |
·增效复配配比的筛选方法 | 第56页 |
·大田药效试验方法 | 第56-57页 |
·数据分析 | 第57页 |
2 结果与分析 | 第57-65页 |
·吡虫啉-吡蚜酮增效复配比例的筛选 | 第58-61页 |
·吡虫啉-吡蚜酮增效复配大田药效试验 | 第61-65页 |
3 讨论 | 第65-68页 |
第五章 呋虫胺-吡蚜酮复配剂的筛选 | 第68-78页 |
摘要 | 第68页 |
1 材料与方法 | 第68-69页 |
·试验材料 | 第68-69页 |
·药剂的配制方法 | 第69页 |
·药剂毒力的生物测定 | 第69页 |
·增效复配配比的筛选方法 | 第69页 |
·数据分析 | 第69页 |
2 结果与分析 | 第69-74页 |
·毒力回归曲线的测定 | 第69-70页 |
·Mansour法初步评价联合毒力 | 第70-71页 |
·孙云沛法评价呋虫胺-吡蚜酮不同配比的联合毒力 | 第71-74页 |
3 讨论 | 第74-78页 |
全文总结 | 第78-80页 |
参考文献 | 第80-88页 |
附录:发表的学术论文 | 第88-90页 |
致谢 | 第90页 |