| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 1 材料和方法 | 第15-28页 |
| ·主要实验仪器 | 第15-18页 |
| ·实验仪器 | 第15页 |
| ·药物和试剂 | 第15-16页 |
| ·RT-PCR主要试剂的配制 | 第16页 |
| ·蛋白质免疫印迹法（Western-blotting)试剂的配制 | 第16-18页 |
| ·动物实验 | 第18-20页 |
| ·实验动物 | 第18页 |
| ·动物分组 | 第18-19页 |
| ·饲料配制 | 第19-20页 |
| ·药物灌胃 | 第20页 |
| ·实验方法 | 第20-28页 |
| ·统计学处理 | 第28页 |
| 2 结果 | 第28-39页 |
| ·一般情况观察 | 第28页 |
| ·糖尿病造模阶段 | 第28-30页 |
| ·药物干预阶段 | 第30-33页 |
| ·干预后各组间大鼠肝脏AMPKa及胰腺UCP2 mRNA表达量的变化 | 第33-34页 |
| ·干预后各组间人鼠肝脏AMPKoup-AMPKoi及胰腺UCP2蛋白的变化 | 第34-38页 |
| ·相关性分析 | 第38-39页 |
| 3 讨论 | 第39-46页 |
| ·2型糖尿病动物模型的选择与建立 | 第39页 |
| ·噻唑烷二酮类(TZDs)药物对2型糖尿病的的影响 | 第39-40页 |
| ·黄芪多糖(APS)改善2型糖尿病胰岛素抵抗的作用 | 第40-41页 |
| ·APS对AMPK的影响 | 第41-43页 |
| ·APS对UCP2的影响 | 第43-46页 |
| ·APS对AMPK和UCP2的影响 | 第46页 |
| 4 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-54页 |
| 综述 | 第54-64页 |
| 参考文献 | 第60-64页 |
| 主要缩略语 | 第64-65页 |
| 攻读学位期间发表文章及获奖情况 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 个人简历 | 第67页 |
