| 摘要 | 第4-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 第一章 序言 | 第12-14页 |
| 第二章 材料和方法 | 第14-26页 |
| 2.1 材料 | 第14-19页 |
| 2.1.1 胶质瘤组织标本 | 第14页 |
| 2.1.2 细胞 | 第14页 |
| 2.1.3 siRNA | 第14页 |
| 2.1.4 主要试剂 | 第14-18页 |
| 2.1.5 主要仪器 | 第18-19页 |
| 2.2 方法 | 第19-26页 |
| 2.2.1 WB步骤 | 第19-21页 |
| 2.2.2 石蜡切片的免疫组化 | 第21-22页 |
| 2.2.3 胶质瘤细胞株的培养 | 第22页 |
| 2.2.4 脂质体Lipofectamine 2000转染细胞 | 第22-23页 |
| 2.2.5 流式细胞仪检测细胞周期 | 第23页 |
| 2.2.6 CCK-8 法检测细胞增殖活性 | 第23-24页 |
| 2.2.7 克隆形成试验 | 第24页 |
| 2.2.8 细胞划痕试验 | 第24页 |
| 2.2.9 Transwell迁移实验 | 第24-25页 |
| 2.2.10 细胞凋亡的检测 | 第25页 |
| 2.2.11 统计分析 | 第25-26页 |
| 第三章 结果 | 第26-34页 |
| 3.1 Gpx4在胶质瘤组织中过表达 | 第26-27页 |
| 3.1.1 WB法检测正常脑组织以及胶质瘤组织中Gpx4的表达 | 第26页 |
| 3.1.2 免疫组化法检测胶质瘤组织中Gpx4的表达 | 第26-27页 |
| 3.2 Gpx4的表达与临床病理特征之间的相关性分析 | 第27-28页 |
| 3.3 Gpx4在胶质瘤中的表达与患者预后之间的关系 | 第28-29页 |
| 3.4 Gpx4在胶质瘤细胞中的表达 | 第29页 |
| 3.5 U87细胞中Gpx4干扰质粒的选取 | 第29-31页 |
| 3.5.2 敲低Gpx4的表达能够抑制胶质瘤细胞的增殖 | 第30-31页 |
| 3.6 Gpx4表达的下调影响胶质瘤细胞的迁移 | 第31-32页 |
| 3.7 Gpx4表达的下调可以诱导胶质瘤细胞的凋亡 | 第32-34页 |
| 第四章 讨论 | 第34-36页 |
| 第五章 结论 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-42页 |
| 综述 | 第42-55页 |
| 综述参考文献 | 第48-55页 |
| 英文缩写词表 | 第55-56页 |
| 在攻读博士学位期间公开发表的论文与参加的项目 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
