| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 第1章 绪论 | 第9-21页 |
| ·课题背景 | 第9-12页 |
| ·国内外研究现状 | 第12-16页 |
| ·植物启动子结构与功能 | 第12-14页 |
| ·植物转基因技术 | 第14-16页 |
| ·植物启动子结构与功能研究方法 | 第16-19页 |
| ·凝胶电泳迁移率实验（Electrophoretic Mobility Shift Assays ，EMSA） | 第16-17页 |
| ·植物报告基因 | 第17-19页 |
| ·本文研究的目的及意义 | 第19页 |
| ·本文研究内容 | 第19-21页 |
| 第2章 材料与方法 | 第21-40页 |
| ·实验材料 | 第21-22页 |
| ·植物材料 | 第21页 |
| ·质粒、菌株 | 第21页 |
| ·酶及主要试剂 | 第21-22页 |
| ·主要仪器设备 | 第22页 |
| ·实验方法 | 第22-40页 |
| ·常用试剂 | 第22-26页 |
| ·PlantProm DB-TSSP分析 | 第26-27页 |
| ·TFSEARCH分析 | 第27页 |
| ·PLACE分析 | 第27页 |
| ·植物基因组DNA提取 | 第27-28页 |
| ·引物的设计与合成 | 第28页 |
| ·PCR反应体系与条件 | 第28-30页 |
| ·PCR产物序列测定 | 第30页 |
| ·JM109 感受态细胞的制备 | 第30页 |
| ·大肠杆菌细胞转化 | 第30-31页 |
| ·质粒小规模提取 | 第31页 |
| ·酶切 | 第31-32页 |
| ·连接 | 第32页 |
| ·插入片段测序 | 第32页 |
| ·水稻核蛋白提取 | 第32页 |
| ·SDS-PAGE蛋白电泳分析 | 第32-33页 |
| ·同位素探针标记 | 第33-35页 |
| ·EMSA | 第35-37页 |
| ·水稻愈伤组织的培养与继代 | 第37页 |
| ·农杆菌EHA105 感受态制备 | 第37页 |
| ·农杆菌转化 | 第37-38页 |
| ·农杆菌转化水稻愈伤组织 | 第38页 |
| ·转化后愈伤组织的抗性筛选 | 第38页 |
| ·转化后愈伤组织分化再生 | 第38页 |
| ·愈伤组织GUS染色 | 第38-40页 |
| 第3章 实验结果与分析 | 第40-55页 |
| ·pi-hit-1 基因启动子区域软件预测分析 | 第40-42页 |
| ·PlantProm DB-TSSP分析 | 第40页 |
| ·TFSEARCH分析 | 第40页 |
| ·PLACE分析 | 第40页 |
| ·预测结果 | 第40-42页 |
| ·EMSA实验 | 第42-47页 |
| ·核蛋白SDS-PAGE | 第42页 |
| ·水稻基因组DNA提取 | 第42-43页 |
| ·pi-hit-1 基因启动子区片段克隆 | 第43-44页 |
| ·EMSA电泳 | 第44-45页 |
| ·pi-hit-1 基因启动子区片段克隆 | 第45页 |
| ·EMSA电泳 | 第45-46页 |
| ·pi-hit-1 基因启动子区片段克隆 | 第46页 |
| ·EMSA电泳 | 第46-47页 |
| ·GUS报告基因检测启动子活性 | 第47-50页 |
| ·片段克隆 | 第47-48页 |
| ·测序 | 第48页 |
| ·载体pCAMBIA1381Z提取 | 第48页 |
| ·PCR验证 | 第48-49页 |
| ·酶切验证 | 第49-50页 |
| ·测序 | 第50页 |
| ·水稻愈伤组织的诱导与继代 | 第50页 |
| ·水稻愈伤组织转化及抗性愈伤组织的筛选 | 第50页 |
| ·水稻愈伤组织的GUS染色 | 第50页 |
| ·讨论 | 第50-53页 |
| ·启动子区结构分析与预测 | 第50-52页 |
| ·pi-hit-1 基因启动子区结构分析 | 第52-53页 |
| ·GUS报告基因分析启动子活性与组织特异性 | 第53页 |
| ·本章小结 | 第53-55页 |
| 结论 | 第55-56页 |
| 展望 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-60页 |
| 附录1 载体pCAMBIA1381Z | 第60-61页 |
| 附录2 测序结果 | 第61-65页 |
| 致谢 | 第65页 |