| 摘要 | 第1-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 缩写词对照表 | 第13-14页 |
| 第一章 引言 | 第14-29页 |
| 1. 水体富营养化 | 第14-15页 |
| 2 MC-LR及其危害 | 第15-17页 |
| 3 自然界中氮元素与亚硝酸盐含量 | 第17-18页 |
| ·自然界中的亚硝酸盐 | 第17页 |
| ·富营养化水中的亚硝酸盐 | 第17-18页 |
| 4 MC-LR检测方法研究综述 | 第18-20页 |
| ·化学仪器分析法 | 第18-19页 |
| ·生物分析法 | 第19-20页 |
| 5 MC-LR降解方法研究综述 | 第20-26页 |
| ·物理法 | 第21页 |
| ·生物降解法 | 第21-22页 |
| ·化学降解法 | 第22-24页 |
| ·高级氧化技术 | 第24-26页 |
| ·UV_(365)/NaNO_2反应体系研究进展 | 第26页 |
| 6 研究目的和意义 | 第26-27页 |
| 7 技术路线 | 第27-29页 |
| 第二章 铜绿微囊藻细胞内MC-LR提取和HPLC检测 | 第29-44页 |
| 1 材料与试剂 | 第29-31页 |
| ·供试藻种 | 第29-30页 |
| ·试剂 | 第30页 |
| ·仪器 | 第30-31页 |
| 2 实验方法与步骤 | 第31-34页 |
| ·从铜绿微囊藻细胞中提取并纯化MC-LR | 第31-32页 |
| ·MC-LR检测 | 第32-33页 |
| ·MC-LR在不同比例甲醇溶液中的标准曲线 | 第33-34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-41页 |
| ·MC-LR的HPLC检测结果 | 第34-35页 |
| ·铜绿微囊藻细胞中MC-LR含量 | 第35页 |
| ·MC-LR的标准曲线 | 第35-36页 |
| ·MC-LR的回收率 | 第36-37页 |
| ·不同甲醇含量的溶液中MC-LR的HPLC标准曲线 | 第37-41页 |
| 4 讨论 | 第41-43页 |
| ·MC-LR标准样品的制备 | 第41页 |
| ·HPLC检测的流动相选择 | 第41-42页 |
| ·固相萃取过程中洗脱液的选择 | 第42-43页 |
| 5. 本章小结 | 第43-44页 |
| 第三章 HNO_2对MC-LR的降解 | 第44-60页 |
| 1 实验材料与试剂 | 第44-45页 |
| ·供试藻种 | 第44页 |
| ·化学试剂 | 第44-45页 |
| ·仪器与设备 | 第45页 |
| 2 实验方法与步骤 | 第45-48页 |
| ·MC-LR提取和溶液制备 | 第45页 |
| ·MC-LR的HPLC检测 | 第45-46页 |
| ·实验设计 | 第46-47页 |
| ·不同参数对MC-LR降解的影响 | 第47-48页 |
| 3 结果与分析 | 第48-55页 |
| ·降解过程中MC-LR的HPLC检测结果 | 第48-49页 |
| ·pH对MC-LR降解的影响 | 第49-50页 |
| ·NaNO_2浓度对MC-LR降解的影响 | 第50-51页 |
| ·MC-LR浓度对其降解速率的影响 | 第51-52页 |
| ·降解动力学分析 | 第52-53页 |
| ·反应速率常数与溶液中理论亚硝酸浓度的关系 | 第53-55页 |
| 4 降解机理分析 | 第55-58页 |
| ·反应途径1:酸催化亚硝化反应 | 第55页 |
| ·反应途径2:重氮化反应 | 第55-56页 |
| ·反应途径2:亚硝酸与Adda基团末端的苯环反应 | 第56-58页 |
| 5 讨论 | 第58-59页 |
| 6 小结 | 第59-60页 |
| 第四章 UV_(365)/HNO_2对MC-LR的降解 | 第60-79页 |
| 1 实验材料与试剂 | 第60-61页 |
| ·供试藻种 | 第60页 |
| ·化学试剂 | 第60-61页 |
| ·仪器与设备 | 第61页 |
| 2 实验方法与步骤 | 第61-65页 |
| ·MC-LR提取和溶液制备 | 第61页 |
| ·MC-LR检测 | 第61-62页 |
| ·实验方法与步骤 | 第62-64页 |
| ·各参数对MC-LR降解的影响 | 第64-65页 |
| 3 实验结果与分析 | 第65-71页 |
| ·UV_(365)/HNO_2作用下MC-LR的HPLC检测结果 | 第65页 |
| ·pH值对MC-LR降解的影响 | 第65-66页 |
| ·NaNO_2浓度对MC-LR降解的影响 | 第66-67页 |
| ·MC-LR浓度对其降解的影响 | 第67-68页 |
| ·紫外强度对MC-LR降解的影响 | 第68-69页 |
| ·降解动力学分析 | 第69-70页 |
| ·UV_(365)/硝酸对MC-LR降解的协同作用 | 第70-71页 |
| ·中间产物分析 | 第71页 |
| 4 降解机理分析 | 第71-77页 |
| ·反应途径1:OH自由基攻击Adda基团的双键 | 第72-73页 |
| ·反应途径2:OH自由基攻击Adda基团的苯环 | 第73-75页 |
| ·反应途径3:NO自由基与Adda基团的苯环加合 | 第75-76页 |
| ·反应途径4:OH自由基与MC-LR分子中Adda基团上的甲氧基反应 | 第76页 |
| ·反应途径5:OH自由基与MC-LR分子七肽环中的双键反应 | 第76-77页 |
| 5 小结 | 第77-79页 |
| 第五章 UV_(365)/NaNO_2对铜绿微囊藻生长和产毒的影响 | 第79-92页 |
| 1 实验材料与试剂 | 第79-80页 |
| ·供试藻种 | 第79页 |
| ·化学试剂 | 第79-80页 |
| ·仪器与设备 | 第80页 |
| ·光照培养装置 | 第80页 |
| ·紫外光源 | 第80页 |
| 2 实验方法与步骤 | 第80-83页 |
| ·铜绿微囊藻的培养 | 第80-81页 |
| ·UV_(365)/NaNO_2对铜绿微囊藻细胞总数的影响 | 第81页 |
| ·铜绿微囊藻细胞中叶绿素a含量的测定 | 第81-82页 |
| ·UV_(365)/NaNO_2对铜绿微囊藻光合速率的影响 | 第82页 |
| ·UV_(365)/NaNO_2浓度对铜绿微囊藻胞内MC-LR含量的影响 | 第82-83页 |
| ·培养基中硝酸盐和亚硝酸盐含量的测定 | 第83页 |
| 3 结果与分析 | 第83-89页 |
| ·UV_(365)/NaNO_2对铜绿微囊藻细胞生长的影响 | 第83-87页 |
| ·UV_(365)/NaNO_2对铜绿微囊藻产生MC-LR的影响 | 第87页 |
| ·UV_(365)/NaNO_2对培养基中硝酸盐和亚硝酸盐含量的影响 | 第87-89页 |
| 4 讨论 | 第89-90页 |
| ·亚硝酸盐对铜绿微囊藻生长的影响 | 第89页 |
| ·UV_(365)/NaNO_2对铜绿微囊藻生长的影响 | 第89-90页 |
| ·培养基中硝酸盐和亚硝酸盐含量的变化 | 第90页 |
| 5 小结 | 第90-92页 |
| 第六章 结论与展望 | 第92-97页 |
| 1 主要结论 | 第92-95页 |
| ·MC-LR的HPLC检测结果与溶液中甲醇含量的关系 | 第92页 |
| ·使用固相萃取方法纯化MC-LR过程中洗脱液对MC-LR检测结果的影响 | 第92-93页 |
| ·HNO_2对MC-LR的降解作用 | 第93-94页 |
| ·UV_(365)/HNO_2对MC-LR的降解机理 | 第94页 |
| ·UV_(365)/NaNO_2对铜绿微囊藻生长和产毒的影响 | 第94-95页 |
| 2 主要创新点 | 第95页 |
| 3 自然降解实验设计的限制因素和存在的主要问题 | 第95-96页 |
| ·实验模拟条件与自然条件下藻类的生长环境的差别 | 第95页 |
| ·无法模拟自然水体中紫外的强度亚硝酸盐含量和pH值 | 第95-96页 |
| 4 后续研究展望 | 第96-97页 |
| ·紫外/亚硝酸体系在天然有机物降解中的贡献 | 第96页 |
| ·紫外/亚硝酸体系与铜绿微囊藻/MC-LR的关系 | 第96页 |
| ·水华暴发前后氮元素形态变化 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-109页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文及所获专利 | 第109-110页 |
| 致谢 | 第110-112页 |
